Стерол регуляторный элемент-связывающий фактор транскрипции 1 | |||||||
---|---|---|---|---|---|---|---|
Идентификаторы | |||||||
Символ | СРЕБФ1 | ||||||
ген NCBI | 6720 | ||||||
HGNC | 11289 | ||||||
ОМИМ | 184756 | ||||||
ПДБ | 1 утра9 | ||||||
РефСек | NM_004176 | ||||||
UniProt | Р36956 | ||||||
Другие данные | |||||||
Локус | Хр. 17 стр . 11.2 | ||||||
|
стерол регуляторный элемент-связывающий фактор транскрипции 2 | |||||||
---|---|---|---|---|---|---|---|
Идентификаторы | |||||||
Символ | СРЕБФ2 | ||||||
ген NCBI | 6721 | ||||||
HGNC | 11290 | ||||||
ОМИМ | 600481 | ||||||
РефСек | NM_004599 | ||||||
UniProt | Q12772 | ||||||
Другие данные | |||||||
Локус | Хр. 22 q13 | ||||||
|
Белки, связывающие регуляторные элементы стерола ( SREBP ), являются факторами транскрипции , которые связываются с последовательностью ДНК регуляторного элемента стерола TCACNCCAC. [2] SREBP млекопитающих кодируются генами SREBF1 и SREBF2 . SREBP относятся к классу факторов транскрипции «основная спираль-петля-спираль лейциновая молния» . [3] Неактивированные SREBP прикреплены к ядерной оболочке и мембранам эндоплазматического ретикулума . В клетках с низким уровнем стеролов SREBP расщепляются до водорастворимого N-концевого домена, который транслоцируется в ядро. Затем эти активированные SREBP связываются со специфическими последовательностями ДНК регуляторного элемента стерола, тем самым повышая синтез ферментов, участвующих в биосинтезе стеролов. [4] [5] Стерины, в свою очередь, ингибируют расщепление SREBP, и поэтому синтез дополнительных стеринов снижается через отрицательную обратную связь.
Геномы млекопитающих имеют два отдельных гена SREBP ( SREBF1 и SREBF2 ):
Белки SREB косвенно требуются для биосинтеза холестерина , а также для поглощения и биосинтеза жирных кислот . Эти белки работают с асимметричным регуляторным элементом стерола (StRE). SREBP имеют структуру, похожую на белки E-box - binding helix-loop-helix (HLH). Однако, в отличие от белков HLH, связывающих E-box, остаток аргинина заменен на тирозин, что делает их способными распознавать StRE и тем самым регулировать биосинтез мембраны. [7]
Клетки животных поддерживают надлежащие уровни внутриклеточных липидов (жиров и масел) при самых разных обстоятельствах ( гомеостаз липидов ). [8] [9] [10] Например, когда уровень клеточного холестерина падает ниже необходимого уровня, клетка вырабатывает больше ферментов, необходимых для производства холестерина. Основным шагом в этом ответе является производство большего количества транскриптов мРНК , которые направляют синтез этих ферментов . И наоборот, когда вокруг достаточно холестерина, клетка прекращает вырабатывать эти мРНК, и уровень ферментов падает. В результате клетка прекращает вырабатывать холестерин, как только его становится достаточно.
Примечательная особенность этого регуляторного механизма обратной связи была впервые обнаружена для пути SREBP - регулируемого внутримембранного протеолиза (RIP). Впоследствии было обнаружено, что RIP используется почти во всех организмах от бактерий до человека и регулирует широкий спектр процессов, начиная от развития и заканчивая нейродегенерацией.
Особенностью пути SREBP является протеолитическое высвобождение связанного с мембраной фактора транскрипции SREBP. Протеолитическое расщепление освобождает его для перемещения через цитоплазму в ядро. Попав в ядро, SREBP может связываться со специфическими последовательностями ДНК (стериновыми регуляторными элементами или SRE), которые находятся в контрольных областях генов, кодирующих ферменты, необходимые для производства липидов. Это связывание с ДНК приводит к увеличению транскрипции целевых генов .
Белок-предшественник SREBP массой ~120 кДа закреплен в мембранах эндоплазматического ретикулума (ЭР) и ядерной оболочке с помощью двух спиралей, охватывающих мембрану, в середине белка . Предшественник имеет шпильковую ориентацию в мембране, так что как аминоконцевой домен фактора транскрипции , так и COOH-концевой регуляторный домен обращены к цитоплазме . Две спирали, охватывающие мембрану, разделены петлей из примерно 30 аминокислот , которая лежит в просвете ЭР. Для высвобождения транскрипционно активного аминоконцевого домена необходимы два отдельных сайт-специфических протеолитических расщепления. Эти расщепления осуществляются двумя различными протеазами , называемыми протеазой сайта 1 ( S1P ) и протеазой сайта 2 ( S2P ).
В дополнение к S1P и S2P, регулируемое высвобождение транскрипционно активного SREBP требует холестерин-чувствительного белка SREBP cleavage-activating protein ( SCAP ), который образует комплекс с SREBP из-за взаимодействия между их соответствующими карбокси-концевыми доменами. SCAP, в свою очередь, может обратимо связываться с другим мембранным белком, резидентным в ЭР, INSIG. В присутствии стеролов, которые связываются с INSIG и SCAP, INSIG и SCAP также связываются друг с другом. INSIG всегда остается в мембране ЭР, и, таким образом, комплекс SREBP-SCAP остается в ЭР, когда SCAP связан с INSIG. Когда уровни стеролов низкие, INSIG и SCAP больше не связываются. Затем SCAP претерпевает конформационное изменение, которое обнажает часть белка («MELADL»), которая сигнализирует о его включении в качестве груза в везикулы COPII, которые перемещаются из ЭР в аппарат Гольджи. В этих пузырьках SCAP, увлекая за собой SREBP, транспортируется в аппарат Гольджи. Регуляция расщепления SREBP использует примечательную особенность эукариотических клеток — субклеточную компартментализацию, определяемую внутриклеточными мембранами, — чтобы гарантировать, что расщепление происходит только при необходимости.
Попав в аппарат Гольджи, комплекс SREBP-SCAP сталкивается с активным S1P. S1P расщепляет SREBP в участке 1, разрезая его на две половины. Поскольку каждая половина все еще имеет мембранную спираль, каждая остается связанной с мембраной. Вновь образованная аминоконцевая половина SREBP (которая является «деловым концом» молекулы) затем продолжает расщепляться в участке 2, который находится внутри ее мембранной спирали. Это работа S2P, необычной металлопротеазы. Это высвобождает цитоплазматическую часть SREBP, которая затем перемещается в ядро, где активирует транскрипцию целевых генов (например, гена рецептора ЛПНП )
Отсутствие стеролов активирует SREBP, тем самым увеличивая синтез холестерина. [11]
Было показано, что инсулин, производные холестерина, T3 и другие эндогенные молекулы регулируют экспрессию SREBP1c, особенно у грызунов. Серийные анализы делеций и мутаций показывают, что элементы ответа SREBP (SRE) и LXR (LXRE) участвуют в регуляции транскрипции SREBP-1c, опосредованной производными инсулина и холестерина. Агонисты рецептора альфа, активируемого пролиферацией пероксисом ( PPARα ), усиливают активность промотора SREBP-1c через элемент DR1 в -453 в человеческом промоторе. Агонисты PPARα действуют совместно с LXR или инсулином, вызывая липогенез. [12]
Среда, богатая аминокислотами с разветвленной цепью, стимулирует экспрессию гена SREBP-1c через путь mTORC1 / S6K1 . Фосфорилирование S6K1 было увеличено в печени тучных мышей db/db. Кроме того, истощение печеночного S6K1 у мышей db/db с использованием аденовирусного вектора, кодирующего shRNA S6K1, привело к снижению экспрессии гена SREBP-1c в печени, а также к снижению содержания триглицеридов в печени и концентрации триглицеридов в сыворотке. [13]
Активация mTORC1 недостаточна для стимуляции печеночного SREBP-1c при отсутствии сигнализации Akt , что свидетельствует о существовании дополнительного нисходящего пути, также необходимого для этой индукции, который, как предполагается, включает mTORC1-независимое подавление Akt-опосредованного INSIG-2a , специфического для печени транскрипта, кодирующего ингибитор SREBP-1c INSIG2. [14]
Было показано, что FGF21 подавляет транскрипцию белка 1c, связывающего регуляторный элемент стерола (SREBP-1c). Сверхэкспрессия FGF21 улучшила регуляцию SREBP-1c и синтазы жирных кислот (FAS) в клетках HepG2, вызванную обработкой FFA. Более того, FGF21 может ингибировать уровни транскрипции ключевых генов, участвующих в обработке и ядерной транслокации SREBP-1c, и уменьшать количество белка зрелого SREBP-1c. Неожиданно, сверхэкспрессия SREBP-1c в клетках HepG2 может также ингибировать эндогенную транскрипцию FGF21 за счет снижения активности промотора FGF21. [15]
Также было показано, что SREBP-1c повышает регуляцию экспрессии PGC1alpha в бурой жировой ткани специфичным для тканей образом . [16]
Предполагается, что Nur77 ингибирует LXR и экспрессию SREBP-1c, модулируя метаболизм липидов в печени. [17]
SREBP были объяснены в лаборатории лауреатов Нобелевской премии Майкла Брауна и Джозефа Голдштейна в Юго-Западном медицинском центре Техасского университета в Далласе. Их первая публикация на эту тему появилась в октябре 1993 года. [3] [18]