Фотосистема II (или водно-пластохиноновая оксидоредуктаза ) — первый белковый комплекс в энергозависимых реакциях оксигенного фотосинтеза . Он расположен в тилакоидной мембране растений , водорослей и цианобактерий . В фотосистеме ферменты захватывают фотоны света, чтобы заряжать электроны , которые затем переносятся через различные коферменты и кофакторы для восстановления пластохинона до пластохинола. Заряженные электроны заменяются окисляющейся водой с образованием ионов водорода и молекулярного кислорода.
Восполняя потерянные электроны электронами от расщепления воды , фотосистема II обеспечивает электроны для всего фотосинтеза. Ионы водорода (протоны), образующиеся при окислении воды, помогают создать протонный градиент , который используется АТФ-синтазой для генерации АТФ . Заряженные электроны, переданные пластохинону, в конечном итоге используются для восстановления НАДФ+
в NADPH или используются в нециклическом электронном потоке . [1] DCMU — это химикат, часто используемый в лабораторных условиях для ингибирования фотосинтеза. Присутствие DCMU ингибирует электронный поток от фотосистемы II к пластохинону.
Ядро ФСII состоит из псевдосимметричного гетеродимера двух гомологичных белков D1 и D2. [2] В отличие от реакционных центров всех других фотосистем , в которых положительный заряд, находящийся на димере хлорофилла, который подвергается первоначальному фотоиндуцированному разделению зарядов, поровну делится между двумя мономерами, в неповрежденной ФСII заряд в основном локализован на одном центре хлорофилла (70−80%). [3] Из-за этого P680 + является высокоокисляющим и может принимать участие в расщеплении воды. [2]
Фотосистема II ( цианобактерий и зеленых растений) состоит из около 20 субъединиц (в зависимости от организма), а также других вспомогательных, светособирающих белков. Каждая фотосистема II содержит не менее 99 кофакторов: 35 хлорофиллов a, 12 бета-каротинов , два феофитина , два пластохинона , два гема , один бикарбонат, 20 липидов, Mn
4СаО
5кластер (включая два хлорид-иона), один негемовый Fe2+
и два предполагаемых Ca2+
ионов на мономер. [4] Существует несколько кристаллических структур фотосистемы II. [5] Коды доступа PDB для этого белка: 3WU2, 3BZ1, 3BZ2 (3BZ1 и 3BZ2 являются мономерными структурами димера фотосистемы II), [4] 2AXT, 1S5L, 1W5C , 1ILX, 1FE1, 1IZL.
Субъединица | Семья | Функция |
---|---|---|
D1 (ПсбА) | Семейство белков фотосинтетического реакционного центра | Белок реакционного центра, связывает хлорофилл P680, феофитин, бета-каротин, хинон и марганцевый центр |
D2 (ПсбД) | Белок реакционного центра | |
CP43 (PsbC) | Светосборный белок фотосистемы II | Связывает марганцевый центр |
CP47 (PsbB) | ||
О | Белок, стабилизирующий марганец ( InterPro : IPR002628 ) | Белок, стабилизирующий марганец |
По соглашению, названия генов формируются с помощью Psb + буква субъединицы. Например, субъединица O — PsbO . Исключениями являются D1 ( PsbA ) и D2 ( PsbD ). |
Кофактор | Функция |
---|---|
Хлорофилл | Поглощает световую энергию и преобразует ее в химическую энергию |
Бета-каротин | Погасить избыточную энергию фотовозбуждения |
Гем B 559 | Связан с цитохромом b559 (PsbE–PsbF) в качестве вторичного/защитного переносчика электронов |
Феофитин | Первичный акцептор электронов |
Пластохинон | Мобильный внутритилакоидный мембранный переносчик электронов |
Марганцевый центр | Также известен как центр выделения кислорода, или OEC. |
Фотосистема II | |||||||||
---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|
Идентификаторы | |||||||||
Номер ЕС | 1.10.3.9 | ||||||||
Базы данных | |||||||||
ИнтЭнз | IntEnz вид | ||||||||
БРЕНДА | запись BRENDA | ||||||||
ExPASy | NiceZyme вид | ||||||||
КЕГГ | запись KEGG | ||||||||
МетаЦик | метаболический путь | ||||||||
ПРИАМ | профиль | ||||||||
Структуры PDB | RCSB PDB PDBe PDBsum | ||||||||
|
Комплекс, выделяющий кислород, является местом окисления воды. Это металло-оксо кластер, состоящий из четырех ионов марганца (в степени окисления от +3 до +4) [6] и одного двухвалентного иона кальция. Когда он окисляет воду, производя газообразный кислород и протоны, он последовательно доставляет четыре электрона из воды в боковую цепь тирозина (D1-Y161), а затем в сам P680. Он состоит из трех белковых субъединиц, OEE1 (PsbO), OEE2 (PsbP) и OEE3 (PsbQ); четвертый пептид PsbR связан поблизости.
Первая структурная модель комплекса, выделяющего кислород, была решена с использованием рентгеновской кристаллографии из замороженных кристаллов белка с разрешением 3,8 Å в 2001 году. [7] В течение следующих лет разрешение модели постепенно увеличивалось до 2,9 Å . [8] [9] [10] Хотя получение этих структур само по себе было большим достижением, они не показывали комплекс, выделяющий кислород, во всех деталях. В 2011 году OEC PSII была разрешена до уровня 1,9 Å, что позволило выявить пять атомов кислорода, служащих оксосвязями, связывающими пять атомов металла и четыре молекулы воды, связанные с Mn
4СаО
5кластер; в каждом мономере фотосистемы II было обнаружено более 1300 молекул воды, некоторые из которых образуют обширные сети водородных связей, которые могут служить каналами для протонов, молекул воды или кислорода. [11] На данном этапе предполагается, что структуры, полученные с помощью рентгеновской кристаллографии, являются предвзятыми, поскольку есть доказательства того, что атомы марганца восстанавливаются под действием высокоинтенсивных рентгеновских лучей , изменяя наблюдаемую структуру OEC. Это побудило исследователей перенести свои кристаллы на другие рентгеновские установки, называемые рентгеновскими лазерами на свободных электронах , такие как SLAC в США. В 2014 году была подтверждена структура, обнаруженная в 2011 году. [12] Знания структуры фотосистемы II было недостаточно, чтобы точно выяснить, как она работает. Поэтому теперь началась гонка за разгадкой структуры фотосистемы II на разных этапах механистического цикла (обсуждается ниже). В настоящее время структуры состояний S1 и S3 были опубликованы почти одновременно двумя разными группами, показывающими добавление молекулы кислорода, обозначенной O6, между Mn1 и Mn4, [13] [14], что позволяет предположить, что это может быть местом на комплексе, выделяющем кислород, где и производится кислород.
Фотосинтетическое расщепление воды (или выделение кислорода ) является одной из важнейших реакций на планете, поскольку является источником почти всего кислорода в атмосфере. Более того, искусственное фотосинтетическое расщепление воды может способствовать эффективному использованию солнечного света в качестве альтернативного источника энергии.
Механизм окисления воды изучен достаточно подробно. [15] [16] [17] Окисление воды до молекулярного кислорода требует извлечения четырех электронов и четырех протонов из двух молекул воды. Экспериментальное доказательство того, что кислород выделяется посредством циклической реакции комплекса выделения кислорода (OEC) в пределах одной ФСII, было предоставлено Пьером Жолио и др. [18] Они показали, что если адаптированный к темноте фотосинтетический материал (высшие растения, водоросли и цианобактерии) подвергается воздействию серии одиночных оборотных вспышек, выделение кислорода обнаруживается с типичным затухающим колебанием периода четыре с максимумами на третьей и седьмой вспышке и с минимумами на первой и пятой вспышке (для обзора см. [19] ). На основе этого эксперимента Бессель Кок и его коллеги [20] представили цикл из пяти вызванных вспышкой переходов так называемых S-состояний , описывающих четыре окислительно-восстановительных состояния OEC: Когда четыре окислительных эквивалента были сохранены (в состоянии S 4 ), OEC возвращается в свое основное состояние S 0 . При отсутствии света OEC «расслабится» до состояния S 1 ; состояние S 1 часто описывается как «стабильное в темноте». Состояние S 1 в значительной степени считается состоящим из ионов марганца со степенями окисления Mn 3+ , Mn 3+ , Mn 4+ , Mn 4+ . [21] Наконец, промежуточные S-состояния [22] были предложены Яблонским и Лазаром в качестве регуляторного механизма и связи между S-состояниями и тирозином Z.
В 2012 году Ренгер высказал идею о внутренних изменениях молекул воды в типичные оксиды в различных S-состояниях при расщеплении воды. [23]
Ингибиторы PSII используются в качестве гербицидов. Существует два основных химических семейства: триазины , полученные из цианурхлорида [24], из которых наиболее часто используются атразин и симазин , и арилмочевины , которые включают хлортолурон и диурон (DCMU). [25] [26]