Цитруллинирование или деиминирование — это превращение аминокислоты аргинина в белке в аминокислоту цитруллин . Цитруллин не входит в число 20 стандартных аминокислот, кодируемых ДНК в генетическом коде . Вместо этого он является результатом посттрансляционной модификации . Цитруллинирование отличается от образования свободной аминокислоты цитруллина как части цикла мочевины или как побочного продукта ферментов семейства синтазы оксида азота .
Ферменты, называемые аргининдеиминазами (ADI), катализируют деиминирование свободного аргинина, в то время как протеинаргининдеиминазы или пептидиларгининдеиминазы (PAD) заменяют первичную кетиминовую группу (>C=NH) на кетонную группу (>C=O). Аргинин положительно заряжен при нейтральном pH, тогда как цитруллин не имеет чистого заряда. Это увеличивает гидрофобность белка, что может привести к изменениям в сворачивании белка , влияя на структуру и функцию.
Иммунная система может атаковать цитруллинированные белки, что приводит к аутоиммунным заболеваниям, таким как ревматоидный артрит (РА) и рассеянный склероз (РС). Фибрин и фибриноген могут быть благоприятными участками для деиминирования аргинина в ревматоидных суставах. Тест на наличие антител к антицитруллинированному белку (ACP) является высокоспецифичным (88–96%) для ревматоидного артрита, примерно таким же чувствительным, как ревматоидный фактор (70–78%) для диагностики РА, и может быть обнаружен еще до начала клинического заболевания. [1]
Цитруллинированный виментин может быть аутоантигеном при РА и других аутоиммунных заболеваниях и используется для изучения РА. Более того, антитела против мутировавшего цитруллинированного виментина (MCV) могут быть полезны для мониторинга эффектов терапии РА. [2] Система ELISA использует генетически модифицированный цитруллинированный виментин (MCV), природную изоформу виментина, для улучшения производительности теста. [3]
В реакции аргинина с цитруллином один из конечных атомов азота боковой цепи аргинина заменяется кислородом . Таким образом, положительный заряд аргинина (при физиологическом pH) удаляется, изменяя третичную структуру белка . Реакция использует одну молекулу воды и дает аммиак в качестве побочного продукта:
PAD обнаружены у хордовых, но не у низших животных. У млекопитающих обнаружено пять изотипов PAD – PAD1 , PAD2 , PAD3 , PAD4 и PAD6. [4] PAD5 считался уникальным изотипом у людей, однако было показано, что он гомологичен PAD4. [4] Эти изотипы различаются по распределению в тканях и клетках.
Экспрессия PAD1 была обнаружена в эпидермисе и матке, и она участвует в цитруллинировании кератина и филаггрина , ключевых компонентов кератиноцитов . [4]
PAD2 экспрессируется на высоком уровне в центральной нервной системе (ЦНС), включая глаза и мозг, а также скелетные мышцы и селезенку. Транскрипты PAD были обнаружены в глазах мышей C57BL6/J уже на 14,5 день эмбрионального развития. [5] Также было показано, что PAD2 взаимодействует с виментином в скелетных мышцах и макрофагах, вызывая разборку нитей, что предполагает роль в апоптозе . [4]
Одним из целевых субстратов PAD2 является основной белок миелина (MBP). В нормальной сетчатке деиминирование обнаружено почти во всех слоях сетчатки, включая фоторецепторы . Деиминирование также было отмечено в нейрональных клетках, таких как астроциты , микроглия и олигодендроциты , шванновские клетки и нейроны . [6] Метилирование и фосфорилирование MBP активны в процессе миелиногенеза . На раннем этапе развития ЦНС эмбриона деиминирование MBP играет важную роль в сборке миелина. У взрослых деиминирование MBP обнаружено при заболеваниях демиелинизации, таких как рассеянный склероз. MBP может поражать различные типы клеток в каждом случае. [7]
Экспрессия PAD3 связана с модификацией овечьей шерсти. Цитруллинирование трихогиалина позволяет ему связывать и сшивать кератиновые нити, направляя рост шерстяного волокна. [4]
PAD4 регулирует экспрессию генов посредством модификаций гистонов . ДНК оборачивается вокруг гистонов, и гистоновые белки могут контролировать экспрессию ДНК, когда химические группы добавляются и удаляются. Этот процесс известен как посттрансляционная обработка или посттрансляционная модификация, потому что он происходит на белке после трансляции ДНК. Роль посттрансляционной обработки в регуляции генов является предметом растущей области исследований, эпигенетики . Одним из механизмов модификации является метилирование . Метильная группа (CH 3 ) связывается с аргинином на гистоновом белке, изменяя связывание ДНК с гистоном и позволяя транскрипции происходить. Когда PAD превращает аргинин в цитруллин на гистоне, он блокирует дальнейшее метилирование гистона, ингибируя транскрипцию. [8] [9] Основным изотипом для этого является PAD4, который деиминирует аргинины и/или монометилированные аргинины на гистонах 3 и 4, отключая эффекты метилирования аргинина. [10]
При ревматоидном артрите и других аутоиммунных заболеваниях, таких как псориатический артрит , системная красная волчанка и синдром Шегрена , аутоантитела часто атакуют цитруллинированные белки. Наличие антител к антицитруллинированным белкам является стандартным тестом на ревматоидный артрит, и оно связано с более тяжелым заболеванием. Цитруллинированные белки также обнаруживаются в клеточном детрите, сопровождающем разрушение клеток при болезни Альцгеймера и после курения сигарет. Таким образом, цитруллинирование, по-видимому, является частью механизма, который стимулирует иммунную систему при аутоиммунном заболевании. Однако цитруллинированные белки также можно обнаружить в здоровой слизистой оболочке толстой кишки . [11] [12] [13] [14] [15] [16]
Первый всеобъемлющий учебник по деиминации был опубликован в 2014 году. [17]
Цитруллинированные пептиды и белки могут быть обнаружены с помощью антител, нацеленных на цитруллинированные остатки, или обнаружены с помощью протеомных технологий на основе масс-спектрометрии . Цитруллинирование аргинина приводит к моноизотопному увеличению массы +0,984016 Да, что можно измерить с помощью масс-спектрометрии . Сдвиг массы близок к разнице масс между различными изотопами пептида +1,008665, что можно ошибочно принять за цитруллинированный пептид, особенно на приборах с низким разрешением. Однако это не такая уж большая проблема с современными масс-спектрометрами с высоким разрешением/высокой точностью. Более того , сдвиг массы идентичен сдвигу массы, вызванному дезамидированием боковой цепи аминокислоты аспарагина или глутамина , которые являются распространенными модификациями.
Остатки цитруллина могут быть химически модифицированы бутандионом или биотинилированием перед анализом, что приводит к другому сдвигу массы, и эта стратегия успешно использовалась для облегчения идентификации с помощью масс-спектрометрии . [18] [19]
Другой подход заключается в использовании нейтральной потери изоциановой кислоты (HNCO) из остатков цитруллина при низкоэнергетической диссоциационной фрагментации, вызванной столкновением, в масс-спектрометрах. Потеря вызывает сдвиг массы на −43,0058 Да, который может быть использован масс-спектрометрами для преимущественного выбора цитруллинированных пептидов для фрагментации (секвенирования). [20] [21]
Наконец, можно использовать потерю положительного заряда при физиологическом pH, вызванную цитруллинированием. Перед протеомным анализом снизу вверх белки ферментативно расщепляются на пептиды. Обычно используется протеаза трипсин , которая расщепляет после положительно заряженных остатков аргинина и лизина . Однако трипсин не может расщеплять после остатка цитруллина, который нейтрален. Пропущенное расщепление после остатка цитруллина вместе с правильным смещением массы можно использовать в качестве специфического и чувствительного маркера цитруллинирования, и эта стратегия совместима со стандартными рабочими процессами протеомики снизу вверх .