Аминоаллиловый нуклеотид — это нуклеотид с модифицированным основанием, содержащим аллиламин . Они используются при пост-маркировке нуклеиновых кислот методом флуоресцентной детекции в микрочипах . Они реагируют с группой эфира N-гидроксисукцинимида , которая помогает прикрепить флуоресцентный краситель к первичной аминогруппе нуклеотида. Эти нуклеотиды известны как 5-(3-аминоаллил ) -нуклеотиды, поскольку аминоаллильная группа обычно присоединена к углероду 5 пиримидинового кольца урацила или цитозина . Первичная аминогруппа в аминоаллильном фрагменте является алифатической и, таким образом, более реакционноспособной по сравнению с аминогруппами, которые непосредственно присоединены к кольцам ( ароматическим ) оснований. Общие названия аминоаллиловых нуклеозидов изначально сокращаются до aa- или AA- для обозначения аминоаллила. 5-углеродный сахар указывается с или без строчной буквы «d», что указывает на дезоксирибозу , если она включена, или на рибозу, если нет. Наконец, указаны азотистое основание и количество фосфатов (т.е. аа-УТФ = аминоаллилуридинтрифосфат ).
Целью объединения флуоресценции и нуклеиновых кислот было обеспечение неизотопной метки , которая может быть обнаружена для изучения ДНК или РНК . Этот тип маркировки позволяет ученым изучать ДНК или РНК в их структуре, функции или образовании с другими нуклеиновыми кислотами. [2] Первая базовая модификация для флуоресцентной маркировки произошла в 1971 году с 4-тиоуридином и 4-тиоурацилом. [3] Это исследование наряду с другими, которые включали различные типы прямой и непрямой маркировки через: аналоги , добавление через ферменты или другие методы, сделало маркировку нуклеотидов намного более безопасной для ученых, изучающих ДНК. [2]
По мере того, как приборы и технологии в области ДНК-микрочипов становятся все более продвинутыми , для дальнейших научных исследований потребуются более совершенные реагенты и методы. Было показано, что флуоресцентная маркировка с помощью Cy3 является недостаточной и искажает результаты; вместо этого был выбран метод включения аминоаллиловых нуклеотидов. Использование аминоаллиловых нуклеотидов в качестве непрямой флуоресцентной маркировки, по-видимому, сводит на нет проблемы с чувствительностью, наблюдаемые при цианиновой маркировке . [4]
Аминоаллильные нуклеозиды можно синтезировать с помощью реакции Хека , как показано на рисунке ниже. [5]
На изображении выше слева находится модифицированный нуклеозид с йодом (йод добавляется посредством электрофильного галогенирования ) в пятом углероде пиримидинового кольца. Его образование может быть связано с реакцией с аллиламином, и различные реагенты посредством связи Хека способны удалить галогеновую группу из основания и добавить аллиламин, чтобы стать аминоаллиловым нуклеозидом, показанным справа. [5] Продукт справа затем используется в молекулярной биологии для синтеза РНК. [4] [6] [7]
Другие реакции включают использование синтеза в одном сосуде с другими галогенами . [8]
Первичный амин на аминоаллильном нуклеотиде реагирует с аминореактивными красителями [9], такими как цианин и запатентованные красители [10] [11] , которые содержат реактивную уходящую группу, такую как сукцинимидиловый эфир ( NHS ). Аминогруппы, непосредственно присоединенные к кольцу основания, не затрагиваются. Эти нуклеотиды используются для маркировки ДНК. [4] [6] [10] [11] [12]
Аминоаллил NTP используются для непрямой маркировки ДНК в ПЦР , ник-трансляции , удлинении праймеров и синтезе кДНК . [13] Эти меченые NTP полезны из-за их применения в лабораториях молекулярной биологии, где они не имеют возможности работать с радиоактивным материалом. Например, 5-(3-аминоаллил)-уридин (AA-UTP) более эффективны для высокоплотной маркировки ДНК, чем для предварительной маркировки ДНК. После ферментативного добавления NTP можно добавить флуоресцентные красители аминных реагентов для обнаружения молекулы ДНК. [7] При включении в молекулы ДНК или РНК ДНК/РНК- полимеразой 5-(3-аминоаллил)-UTP обеспечивает реактивную группу для добавления других химических групп. Таким образом, аминоаллил модифицированную ДНК или РНК можно пометить любым соединением, которое имеет аминореактивную группу. aa-NTP, включенные в ДНК/РНК в сочетании с реагентами для связывания вторичного красителя, могут использоваться для анализа массива. [6]
cDNA полагается на аминоаллильную маркировку для целей обнаружения. Хотя прямая маркировка dNTP является самым быстрым и дешевым методом флуоресцентной маркировки, она невыгодна, поскольку последовательность позволяет использовать только один модифицированный нуклеотид. Другим недостатком прямой маркировки являются громоздкие нуклеотиды, однако это можно преодолеть с помощью непрямой маркировки с использованием аминоаллильных модифицированных нуклеотидов. [14] Простым способом проверки успешности маркировки является цвет; Хорошая маркировка приведет к появлению видимого синего (Cy5) или красного (Cy3) цвета в конечном материале. [15]
Другой процесс, который использует аминоаллиловую маркировку, — это NASBA (Nucleic Acid Sequence Based Amplification), высокочувствительная технология амплификации РНК. В этом конкретном случае модифицированные РНК aaUTP были помечены флуоресцентным рынком Cy3. NASBA в сочетании с аминоаллил-UTP-маркировкой очень полезен для многих различных областей микробной диагностики, включая мониторинг окружающей среды , обнаружение биологических угроз, мониторинг промышленных процессов и клиническую микробиологию. [16] ДНК-микрочип — это еще один метод, который использует именно AA-NTP, что делает тестирование ДНК-микрочипов более быстрым и дешевым. [12]
Постсинтезная маркировка позволяет избежать проблем, возникающих при прямом ферментативном включении Cy-меченых dNTP, путем создания зондов с одинаковой эффективностью маркировки. При непрямой маркировке модифицированные амином NTP включаются во время обратной транскрипции , амплификации РНК или ПЦР . Аминоаллил-NTP включаются с такой же эффективностью, как и немодифицированные NTP во время полимеризации. [17] [18]
Проблемы с маркировкой: Аминогруппа в аминоаллил-модифицированном нуклеотиде реагирует с красителями, такими как цианиновый ряд, или другими запатентованными красителями. Проблема возникает, когда красители реагируют с буферными агентами , которые необходимы для надлежащего хранения нуклеотидов. Однако для решения этой проблемы можно использовать карбонатный буфер. [19]