Sulfurimonas

Род бактерий

Sulfurimonas
Научная классификация
Домен:
Тип:
Сорт:
Заказ:
Семья:
Sulfurimonadaceae
Род:
Sulfurimonas

Инагаки и др. 2003 [1]
Типовой вид
Sulfurimonas автотрофика
Инагаки и др. 2003
Разновидность

См. текст

Sulfurimonas — род бактерий класса Campylobacterota , известный тем, что восстанавливает нитрат, окисляет как серу, так и водород и содержит гидрогеназы группы IV. [2] [3] [4] Этот род состоит из четырех видов: Sulfurimonas autorophica , Sulfurimonas denitrificans , Sulfurimonas gotlandica и Sulfurimonas paralvinellae . Название рода происходит от латинского слова « sulfure» и греческого слова «monas» , которые вместе означают «стержень, окисляющий серу». [5] Размер бактерий варьируется от 1,5 до 2,5 мкм в длину и от 0,5 до 1,0 мкм в ширину. [6] [7] [4] Представители рода Sulfurimonas встречаются в самых разных средах, включая глубокие морские жерла, морские отложения и наземные местообитания. [3] Их способность выживать в экстремальных условиях объясняется множественными копиями одного фермента [ необходимо дополнительное объяснение ] . [3] Филогенетический анализ предполагает, что представители рода Sulfurimonas имеют ограниченную способность к распространению, и на его видообразование повлияла географическая изоляция, а не гидротермальный состав [ необходима ссылка ] . Глубоководные океанические течения влияют на распространение Sulfurimonas spp., влияя на его видообразование . [8] Как показано в отчете MLSA [ необходимо дополнительное объяснение ] о глубоководных гидротермальных источниках Campylobacterota , Sulfurimonas имеет более высокую способность к распространению по сравнению с термофилами глубоководных гидротермальных источников , что указывает на аллопатрическое видообразование [ необходима проверка ] . [8]

Характеристики

Таблица 1. Специфические характеристики четырех видов рода Sulfurimonas
РазновидностьРазмерМорфология [9]ДвижениеТемпературная зависимость [6]Условия среды обитанияОптимальные условияВремя удвоения при оптимальных условиях (часы)
Sulfurimonas автотрофика1,5-2,5 х 0,5-1,0 мкм [5]СтерженьОдин полярный жгутик [5]МезофильныйТемпература: 10 - 40 °C [5] pH: 5 - 9 [5]Температура: 23 - 26 °C [9] PH= 6,5 [6]1.4 [9]
Sulfurimonas denitrificansПеременная длина с шириной ~0,3 мкм [6]Короткий стержень или спириллоподобныйН/ДМезофильныйТемпература: 10-30 °C; [9] pH: 7 [10]Температура: 22 °C [9] PH=7 [6]12 [9]
Sulfurimonas gotlandica0,66±0,083 х 62,1±0,54 мкм [11]Изогнутый стержень или спириллоподобныйОдин полярный жгутик или два жгутика на противоположных полюсах [11]ПсихотолерантныйТемпература: 4–20 °C [6] pH: 6,7–8,0 [6]Температура: 15 °C [6]13 [6]
Sulfurimonas paralvinellae1,50–2,50 мкм × 0,6–0,8 мкм [9]Стерженьдвижущийся жгутик

1,5–2,5 мкм в длину и 0,6–0,8 мкм в ширину [9]

МезофильныйТемпература: 4-35 °C [9] pH: 5,4-8,6Температура: 30 °C [9] pH=6,1 [6]13-16 [9]

История признания

«Auto» и «trophicos» происходят от греческих слов , где «auto» означает сам, а «trophicos» относится к уходу, заботе или кормлению, что указывает на его автотрофность. [4] Численность и распределение подгрупп внутри Campylobacterota и рода Sulfurimonas были обнаружены в водной толще с использованием ряда методов, включая клонирование 16S рРНК, катализируемое отложение репортера и флуоресцентную гибридизацию in situ (CARD-FISH), а также количественные измерения ПЦР. [12] Образцы воды были собраны на разных глубинах, и концентрации питательных веществ, кислорода и серы были измерены сразу после взятия пробы. Образец был измерен на скорость фиксации углерода , а ДНК была извлечена и специфические последовательности амплифицированы с помощью ПЦР. [12]

Часть « denitrificans» в названии Sulfurimonas denitrificans (S. denitrificans ) относится к его способности восстанавливать нитрат в диазотный газ, процесс, известный как денитрификация . В 2006 году Sulfurimonas denitrificans был последним видом, помещенным в род Sulfurimonas , поскольку в 2000 году он был ошибочно классифицирован как род Thiomicrospira . [13]

Исследования Sulfurimonas gotlandica (S. gotlandica ) в основном проводились в Балтийском море с использованием просвечивающей электронной микроскопии и флуоресцентной микроскопии с фосфорновольфрамовой кислотой и окраской DAPI в качестве форм визуализации. [6] [14] [13]

Sulfurimonas paralvinellae был впервые получен из гнезда глубоководных полихетных червей , в частности из семейства Alvinellidae . Представители рода Paralvinellae были обнаружены в сульфидном холме в глубоководном гидротермальном жерле на месторождении Ихея-Норт в Среднеокинавском желобе. [9] Первоначально штамм был отделен от гнезда методом разбавления до вымирания. Штамм был назван GO25 T и имел сходные физиологические и филогенетические характеристики с Sulfurimonas autotrophica. Позднее было установлено, что этот вид отличается от Sulfurimonas autotrophica наличием особого энергетического метаболизма . [3] [9]

Филогения

Принятая в настоящее время таксономия основана на Списке названий прокариот, имеющих постоянное место в номенклатуре (LPSN) [15] и Национальном центре биотехнологической информации (NCBI) [16].

LTP на основе 16S рРНК _10_2024 [17] [18] [19]120 маркерных белков на основе GTDB 09-RS220 [20] [21] [22]
Sulfurimonas

S. литотрофная

С. марина

S. готландская

S. aquatica

S. денитрифицирующие

S. crateris

S. xiamenensis

Sulfurimonas

S. denitrificans (Timmer-ten Hoor 1975) Takai et al. 2006 г.

S. crateris Ратникова и др. 2020 год

S. xiamenensis Wang et al. 2020 год

S. lithotrophica Ван и др. 2020

« Ca.S.baltica » Henkel et al. 2021 год

« Ca. S. marisnigri» Henkel et al. 2019 г., ранее Henkel et al. 2021 год

S. gotlandica Labrenz et al. 2013 год

« S. hongkongensis » Cai et al. 2014 год

« Ca.S.ponti » Ван Влит и др. 2021 год

S. aquatica Kojima et al. 2023 год

С. Марина Ван и др. 2022

S. indica Ху и др. 2021

S. paralvinellae Takai et al. 2006 г.

S. autotropica Inagaki et al. 2003 г.

" S. hydrogeniphila " Ван и др. 2021

« S. sediminis » Wang et al. 2021 год

Метаболизм

Как правило, бактерии имеют много путей метаболизма , и в случае членов рода Sulfurimonas, это то, как они классифицируются в таксоны. [23] Члены рода Sulfurimonas живут в широком диапазоне сред и играют жизненно важную роль в хемоавтотрофных процессах, в зависимости от среды. [3] Было показано, что изоляты четырех видов этого рода растут с широким спектром акцепторов и доноров электронов, что позволяет членам рода Sulfurimonas расти в самых разных средах. [3] Таким образом, успех Sulfurimonas spp. приписывается его способности быть хемолитотрофом, его гибкому метаболизму смены акцепторов/доноров электронов и источников неорганического углерода, его толерантности к кислороду и его способности изменяться в зависимости от среды. [3] [24] В различных средах наблюдаются четыре типа энергетического метаболизма ; включая метаболизм серы, водорода, азота и углерода. [13]

Метаболизм серы

Исследования показали, что Sulfurimonas spp. , как сероокисляющая Epsilonproteobacterium, использует широкий спектр доноров электронов для роста, включая сульфид, серу, тиосульфат и сульфит. [3] Однако, как показано ниже, не все виды могут использовать каждый из упомянутых доноров электронов ( таблица 2 ). Серооксигеназаредуктаза (SOR) катализирует серу , создавая сульфит , тиосульфат и сульфид . [25] Гены SOR обнаружены у S. gotlandica и S. autotrophica, но отсутствуют у S. denitrificans . [13] Предполагается, что S. denitrificans утратила гены SOR из-за среды обитания с низким содержанием сульфида в голландском Ваддензе . [13]

Sulfurimonas paralvinellae способна использовать как молекулярный водород , так и восстановленную серу для метаболизма, что делает ее всего лишь второй глубоководной кампилобактерией, которая это делает. [9] Sulfurimonas paralvinellae также способна использовать дрожжевой экстракт в качестве источника серы. [3] Молекулярный водород, как было отмечено, обеспечивает более высокую скорость роста и является предпочтительным для Sulfurimonas paralvinellae по сравнению со свободной восстановленной серой, даже если последняя присутствует в среде в избытке. Это, возможно, можно объяснить меньшим количеством молекулярного водорода, необходимым для поддержания роста в бактериальной клетке, по сравнению с восстановленной серой. [9]

Таблица 2. Список доноров электронов для видов Sulfurimonas . [3]

Sulfurimonas autorphicaSulfurimonas denitrificansSulfurimonas gotlandicaSulfurimonas paralvinellae
сульфидХ
Сера
Тиосульфат
сульфитХХХ
ВодородХ

За исключением S. paralvinellae, все виды Sulfurimonas могут использовать сульфид в качестве донора электронов, окисляя сульфид в сульфат. [3] Используемый путь окисления сульфида называется сульфид:хинонредуктазой (SQR) и кодируется генами, участвующими в пути, ответственном за катализ окисления сульфида. [3] [26] Во всех царствах известно шесть типов белков SQR. [3]

Большинство изолятов Epsiolonproteobacteria имеют SQR, классифицированные как Тип II, IV и VI, никогда не имеют Типа I и иногда имеют Тип III и V. [3] Sulfurimonas — единственный известный род в Campylobacterota , который имеет SQR Типа III и V. [3] Тип III обнаружен только у S. denitrificans и S. gotlandica . [3] Тип IV SQR высококонсервативен и обнаружен у всех четырех видов Sulfurimonas , поэтому считается наиболее важным SQR для выживания клеток в роде Sulfurimonas . [3] Согласно исследованию, изучающему гетерологичную экспрессию гомологов SQR в S.denitrificans, у него есть три функциональных SQR: Тип II, III и IV. [26] Другое исследование также показало, что Тип VI SQR отсутствует у S. denitrificans , но он присутствует у трех других видов. [13] Исследователи обнаружили, что SQR типа VI функционирует в средах с высоким содержанием сульфида , [13] и выдвинули гипотезу, что S. 'denitrificans не нуждается в SQR типа VI, поскольку члены этого вида имеют низкую вероятность столкнуться со свободным сульфидом. [13] С другой стороны, S. autotrophic является единственным из четырех видов, который содержит SQR типа V, и был связан с организмами, живущими в кислотных шахтах [5]

Точные роли функциональных SQR остаются неизвестными. [26] Однако, в целом, SQR имеют решающее значение для окисления сульфида, ассимиляции и сигнализации, генерации энергии и устойчивости к тяжелым металлам. [26] Таким образом, представители рода Sulfurimonas вносят значительный вклад в глобальный цикл серы, поскольку все представители этого вида окисляют серу до сульфата. [5]

Метаболизм водорода

Все виды Sulfurimonas, кроме одного, могут использовать водород в качестве источника энергии для роста. [13] Представители S. autotrophica являются единственными представителями Sulfurimonas spp., которые не используют водород, и, как было показано, растут с водородом в аэробных и анаэробных условиях. [6] Напротив, водород иногда используется в качестве донора электронов бактериями, принадлежащими к S. denitrificans , S. gotlandica и S. paralvinellae , вместо соединений на основе серы. [27] [6]

Для катализа метаболизма водорода бактерии, принадлежащие к роду Sulfurimonas, используют [NiFe]-гидрогеназу. Реакция выглядит следующим образом : [28] Существует много различных [NiFe]-гидрогеназ, которые классифицируются по разным группам (группы I–IV) и встречаются во всех четырех видах Sulfurimonas . [13] Поскольку S. autotrophica содержит гидрогеназы, исследование пришло к выводу, что при определенных условиях окружающей среды она может потреблять водород. [5] ЧАС 2 2 ЧАС + + 2 е {\displaystyle H_{2}\longleftrightarrow 2H^{+}+2e^{-}}

Другое исследование показывает, что S. denitrificans растет более эффективно с водородом , чем с тиосульфатом . [13] Три вида Sulfurimonas экспрессируют активную гидрогеназу поглощения водорода и могут расти на водороде. [13] Место обитания бактерий (т. е. морская вода, отложения или гидротермальные источники) будет влиять на уровень кислорода в окружающей среде и, следовательно, на тип метаболизма [13], который они используют.

Азотистый обмен

Насколько нам известно, метаболизм азота происходит у всех представителей, принадлежащих к виду Sulfurimonas, за исключением S. autotrophica [13] . Было показано, что S. autotrophica не может расти при концентрации нитрата натрия 5 мМ в лабораторных условиях. [4] Денитрификация Sulfurimonas spp. играет решающую роль в круговороте азота. [13] Оборот нитрата для S. denitrificans составляет 20 мМ за три (с тиосульфатом и водородом) - шесть дней (тиосульфат и без водорода). [13] Оборот нитрата у двух других видов, S. gotlandica и S. paralvinellae, совершенно разный. [13] S. gotlandica использовал только 1 мМ нитрата в течение 9 дней (с тиосульфатом), а S. paralvinellae использовал 10 мМ нитрата в течение 4 дней (с водородом и серой). [7] [9] Кроме того, S. gotlandica и S. denitrificans могут использовать нитрит вместо нитрата в качестве акцептора электронов. [13] Список акцепторов электронов, которые могут использовать виды Sulfurimonas , приведен в таблице 3 .

Таблица 3. Список акцепторов электронов для видов Sulfurimonas . [13]

Sulfurimonas autorphicaSulfurimonas denitrificansSulfurimonas gotlandicaSulfurimonas paralvinellae
НитратХ
НитритХХ
Кислород

Для катализа реакции метаболизма азота все виды Sulfurimonas имеют каталитическую субъединицу (NapA) периплазматической нитратредуктазы (Nap). Эти эпсиолонпротеобактериальные NapA имеют высокое сродство к нитрату и могут представлять собой адаптацию членов этого рода к низким концентрациям нитрата в окружающей среде в глубоководных жерлах.

Изоляты S. gotlandica и S. denitrificans хорошо адаптированы к флуктуирующим концентрациям кислорода и сероводорода в окружающей среде, поскольку они оба могут использовать нитрат , нитрит или кислород в качестве акцепторов электронов. Их способность использовать нитрат или нитрит в качестве акцептора электронов вместо кислорода расширяет их экологическую нишу за пределы аноксических в гораздо более глубокие области в толще воды.

Видообразование

Виды, составляющие род Sulfurimonas , различаются по своим четким физиологическим и генотипическим различиям. [6] Многие изоляты были частично или полностью секвенированы. Например, геном изолята S. autotrophica содержит приблизительно 2 153 198 пар оснований. [5]

Представители этого рода бактерий обитают в сульфидной воде, пелагических окислительно-восстановительных зонах и глубоководных источниках, где в изобилии присутствуют серосодержащие соединения. [2] [3] [4] Виды рода Sulfurimonas используют различные белки, которые катализируют специфические соединения, обнаруженные в этих областях, что еще больше подчеркивает сходства и различия в их геномах ДНК. [2] [3] [4] [6] [8]

Сходство в последовательностях генов 16S рРНК среди Sulfurimonas gotlandica, Sulfurimonas paralvinellae, Sulfurimonas autotrophica и Sulfurimonas dentrificans составляет более 90% [6] , при этом S. gotlandica имеет сходство от 93,7 до 94,2% с другими видами. [6] Аналогично, S. paralvinellae и S. autotrophica (штамм OK10) имеют 96,3% сходства последовательностей в последовательностях генов 16S рРНК [5] [9], тогда как S. dentrificans и S. autotrophica (OK10) имеют 93,5% сходства последовательностей. [5]

Содержание G + C в геномах некоторых видов схоже. S. gotlandica содержит 33,6 мол.% ДНК G + C (A + T, 66,4 мол.%) [6] , тогда как S. paralvinellae имеет 37,6 мол.% ДНК G + C (63,4 мол.% A + T). [9]

Филогенетический анализ показал, что Sulfurimonas проявляет ограниченную способность к распространению, поскольку на видообразование больше влияет географическое положение, чем гидротермальный состав. [8] Кроме того, на видообразование могут влиять глубоководные течения . [8]

В следующей таблице обобщена информация, предоставленная выше:

Таблица 4: Содержание ДНК и сходство гена 16s рРНК между Sulfurimonas

Содержание ДНК G + C (моль %)Содержание ДНК А + Т (моль%)Сходство гена 16s рРНК (%)
Sulfurimonas автотрофикаН/ДН/Д96,3% сходства с S. paralvinellae.

93,7–94,2% сходства с S. gotlandica.

93,5% сходства с S. dentrificans.

Sulfurimonas

дентрификаны

Н/ДН/Д93,5% сходства с S. autrotrophica (OK10) .

93,7–94,2% сходства с S. gotlandica.

Sulfurimonas gotlandica33,6 моль%66,4 моль%93,7 - 94,2% сходства со ВСЕМИ видами.
Sulfurimonas paralvinellae37,6 моль%63,4 моль%96,3% сходства с S. autrotrophica (OK10) .

93,7–94,2% сходства с S. gotlandica.

Место обитания

Sulfurimonas обычно встречаются в (сульфидогенных) местообитаниях, таких как морские отложения, глубоководные гидротермальные источники, пелагические редоксклины и нефтяные месторождения. [29] Местообитания, в которых они встречаются, отражаются в их генном составе; некоторые представители имеют меньше генов , в то время как другие имеют больше генов, которые связаны со средой, в которой они встречаются. [3] Некоторые из этих генов позволяют использовать различные доноры и акцепторы электронов, что позволяет им обитать в различных средах. [3] В глубоководных гидротермальных источниках окисление сульфида является наиболее важным источником химической энергии для Sulfurimonas spp. [9] По совпадению, высокие концентрации сероводорода в глубоководных источниках образуются в результате высокотемпературного взаимодействия морской воды и горных пород. [9] Примечательно, что микроорганизмы, живущие в глубоком, темном океане, окисляют соединения серы для хемолитоавтотрофии ; этот процесс опосредован микробами. [9] Например, сульфидхинонредуктазы (SQR), обнаруженные во всех изолятах Sulfurimonas spp., способствуют окислению соединений, содержащих серу и тиосульфат . [4] [3] [26] Кроме того, гидрогеназы и другие ферменты позволяют этому конкретному роду колонизировать «разнородные» среды. [3] Из-за зависимости от соединений, содержащих серу, в глубоком море это может создать конкуренцию между видами.

Бактериальные маты обнаружены на глубине около 100 м рядом с активными гидротермальными источниками. [11] Филогенетический анализ показал, что эти бактериальные маты состоят из бактерий рода Sulfurimonas . [11] Похожие бактериальные маты обычно встречаются на подводных горах, созданных подводными вулканами и интенсивным вулканизмом в гидротермальных источниках. [29] Гидротермальные источники способствуют росту бактериальных матов, в которых встречается Sulfurimonas , например, на подводных горах Камаэуаканалоа , Аксиал , Вайлулуу и Суйо , а также на Марианской и Кермадекской дугах. [29]

Биотические взаимодействия

Хищничество

Sulfurimonas (подгруппа GD17) доминирует в хемотрофной денитрификации в пелагических редоксклинах Балтийского моря . [14] [13] [6] Используя такие методы, как анализы хищников и бактериальные культуры, было обнаружено, что популяция Sulfurimonas (подгруппа GD17) имела время удвоения от 1 до 1,5 дней, что намного больше, чем их среднее время удвоения в оптимальных условиях, показанных в Таблице 1. [30] Однако выпас может потреблять популяцию в течение одного дня. [30] Пять активных травоядных , которые обычно встречаются в редоксклинах инфузорий (Oligohymenophorea, Prostomatea) и групп морских жгутиконосцев (MAST-4, Chrysophyta, Cercozoa), были обнаружены с помощью РНК-SIP . [30] В экосистеме холодного просачивания крабы-литодиды ( Paralomis sp .), являющиеся фильтраторами, питаются тиотропными бактериальными матами, которые состоят из множества различных типов бактерий . [30]

Было обнаружено, что при отсутствии других возможных предикторов бактерии, принадлежащие к роду Sulfurimonas , растут в унимодальных отношениях, что предполагает увеличение бактериального разнообразия и производительности. Это означает, что без предикторов эти бактерии могут дифференцироваться и расти экспоненциально. [30]

Симбиоз

Sulfurimonas — род, который обычно наблюдается в симбиозе с другими организмами, в основном морскими кольчатыми червями. Sulfurimonas paralvinellae связан с колониями глубоководных полихет, расположенных рядом с гидротермальными источниками. Гнезда этих червей покрыты восстановленными частицами серы, полученными в результате сочетания микробиологических и химических процессов. Эти частицы серы служат легкодоступным источником энергии для бактерий, принадлежащих к роду Sulfurimonas . [9]

Биотурбация пескожилами в мелководных средах при отсутствии кислорода усиливает метаболизм бактерий филотипа Epsilonproteobacterium , который показывает более 95% сходства с Sulfurimonas denitrificans. Такие действия пескожилов , как рытье и перистальтическая перекачка, заставляют кислород и углекислый газ, растворенные в воде, поступать в осадок. Этот обогащенный слой перемещается вниз и смешивается с нижележащим осадком. Кислород, который извлекается из воды, проникает в этот анаэробный слой и создает сульфат, доступный для использования бактериями для метаболизма . Сульфид из воды также может быть детоксифицирован пескожилами либо с помощью разветвленной дыхательной цепи, либо с помощью окислительно-восстановительной регуляции окисления сульфида. Конечным продуктом этих реакций является тиосульфат, который становится еще одним источником энергии для хемоавтотрофных бактерий, колонизирующих осадок [31]

Соревнование

Бактерии, принадлежащие к роду Sulfurimonas , конкурируют с другими сульфатокисляющими бактериями (SOB) за пищевые ресурсы и интенсивно изучаются из-за их важности в нефтяной промышленности. [32] [31] Сообщества SOB состоят из физиологически разнообразных членов, таких как роды Sulfurimonas , Chlorobia и Chloroflexi . [32] Все эти роды встречаются в нефтяных резервуарах, и Sulfurimonas присутствуют в большом количестве. [31] [32] Члены этого рода занимают приблизительно 26% резервуаров, все из которых различаются по температуре и относительной пропорции других SOB, что является дополнительным указанием на то, что этот род способен расти в широком диапазоне температур. [3] [14] [31] [32] Несмотря на это, Sulfurimonas конкурируют с Thioclava , Sulfuricurvum и Thiohalomonas, которые коррелируют с 15,4%, 12,0% и 17,0% соответственно. [32] Большинство бактерий, присутствующих в этих резервуарах, являются некультивируемыми бактериями, которые не были глубоко изучены. [31] [32] Бактерии вышеупомянутых родов получают свою энергию от окисления восстановленных соединений серы (т. е. сульфида и тиосульфата), что предполагает прямую конкуренцию между ними за серосодержащие соединения [3] [4] [6]

Пищевая цепочка/сеть

Рис. 7. Упрощенная пищевая сеть/цепь Sulfurimonas

Известно, что представители рода бактерий Sulfurimonas влияют на относительное обилие видов вокруг них. [33] В случае штамма S. gotlandica GD1 было показано, что популяции гетеротрофных нанофлагеллятов (HNF) уменьшились, в то время как численность инфузорий и динофлагеллятов осталась относительно постоянной в условиях, богатых кислородом/сероводородом. [33] И наоборот, противоположная тенденция наблюдалась в субоксических условиях, в которых численность HNF и инфузорий увеличилась, тогда как численность динофлагеллятов осталась постоянной. [33] Эти изменения были приписаны как наличию кислорода/сероводорода в окружающей среде, так и потенциальному хищничеству HNF со стороны S. gotlandica . [33]

В другом исследовании было обнаружено, что пять активных травоядных обитают в условиях редоксклина, а именно редоксклинные инфузории, группы морских жгутиконосцев и некоторые виды экосистем холодных просачиваний. [30] [34] Фактически, эти организмы способны потреблять всю популяцию Sulfurimonas в этой конкретной области за день [30]

Экологическая значимость

Для роста виды Sulfurimonas потребляют как восстановленные виды серы, так и окисленные виды азота. Таким образом, представители Sulfurimonas напрямую влияют на биогеохимический цикл этих элементов в средах, где они существуют и численно распространены. Например, Sulfurimonas gotlandica может составлять до 25% микробного сообщества в редоксклине Балтийского моря на основе подсчета клеток CARD-FISH [35] , а Sulfurimonas spp. составили значительное количество прочтений Campylobacterota в исследовании микробного разнообразия в глубоководных диффузных потоках с использованием амплифицированных последовательностей 16S.

Дальнейшие исследования

Sulfurimonas hongkongensis — недавно обнаруженный вид в роде Sulfurimonas. Он был обнаружен в Гонконге, недалеко от прибрежных отложений в канале Kai Tak Approach, соединяющем гавань Виктория. Он вырабатывает энергию в бескислородных условиях. Его донором электронов является тиосульфат, сульфид или водород, а акцептором электронов — нитрат. Его морфология имеет форму стержня и он растет при температуре 15–35 °C (оптимум при 30 °C), pH 6,5–8,5 (оптимум при 7,0–7,5) и 10–60 г л −1 NaCl (оптимум при 30 г л −1 ). Его геном состоит из 34,9% содержания GC, 2290 генов, кодирующих белки, и 42 генов РНК (3 гена рРНК). Его основными жирными кислотами в клетках были C14:0 (4,8%), C16:0 (32,8%), 2-OH C16:0 (9,5%), C16:1 (14,6%), C18:0 (16,9%) и C18:1 (19,2%). Состав этих жирных кислот аналогичен тем, которые обнаружены в изолятах Sulfurimonas paralvinellae' и Sulfurimonas autotrophica', но есть уникальная жирная кислота, представленная 2-OH C16:0, которая определяет его как вид, отличный от других членов рода Sulfurimonas.

Смотрите также

Ссылки

  1. ^ Инагаки, Ф.; Такай, К.; Кобаяши, Х.; Нилсон, КХ; Хорикоши, К. (2003). "Sulfurimonas autotrophica gen. nov., sp. nov., новая сероокисляющая ε-протеобактерия, выделенная из гидротермальных осадков в Среднеокинавском желобе". Int. J. Syst. Evol. Microbiol . 53 (6): 1801– 1805. doi :10.1099/ijs.0.02682-0. PMID  14657107.
  2. ^ abc Cardman, Zena (2014). «Активные прокариотические сообщества вдоль термически и геохимически изменчивого трансекта в гидротермальных отложениях бассейна Гуаймас». ProQuest Dissertations Publishing . ProQuest  1612445722.
  3. ^ abcdefghijklmnopqrstu vwxy Хань, Юйчэнь; Пернер, Мирьям (2015-01-01). "Глобально распространенный род Sulfurimonas: универсальный энергетический метаболизм и адаптации к окислительно-восстановительным реакциям". Frontiers in Microbiology . 6 : 989. doi : 10.3389/fmicb.2015.00989 . PMC 4584964. PMID  26441918 . 
  4. ^ abcdefgh Инагаки, Фумио; Такай, Кен; Кобаяши, Хидеки; Нилсон, Кеннет Х.; Хорикоши, Коки (2003-01-01). "Sulfurimonas autotrophica gen. nov., sp. nov., новая сероокисляющая ε-протеобактерия, выделенная из гидротермальных осадков в Среднеокинавском желобе". Международный журнал систематической и эволюционной микробиологии . 53 (6): 1801– 1805. doi :10.1099/ijs.0.02682-0. PMID  14657107.
  5. ^ abcdefghijk Сикорский, Йоханнес; Мунк, Кристина; Лапидус, Алла; Нгатчу Джао, Оливье Дуплекс; Лукас, Сьюзан; Главина Дель Рио, Тихана; Нолан, Мэтт; Тайс, Хоуп; Хан, Клифф (2010-10-27). "Полная последовательность генома штамма типа Sulfurimonas autotrophica (OK10T)". Стандарты в геномных науках . 3 (2): 194– 202. doi :10.4056/sigs.1173118. ISSN  1944-3277. PMC 3035374. PMID 21304749  . 
  6. ^ abcdefghijklmnopqrst Labrenz, Matthias; Grote, Jana; Mammitzsch, Kerstin; Boschker, Henricus TS; Laue, Michael; Jost, Günter; Glaubitz, Sabine; Jürgens, Klaus (2013-01-01). "Sulfurimonas gotlandica sp. nov., хемоавтотрофная и психротолерантная эпсилонпротеобактерия, выделенная из пелагической редоксклины, и исправленное описание рода Sulfurimonas". International Journal of Systematic and Evolutionary Microbiology . 63 (11): 4141– 4148. doi :10.1099/ijs.0.048827-0. PMC 3836495 . PMID  23749282. 
  7. ^ ab Mammitzsch, Kerstin; Jost, Günter; Jürgens, Klaus (2014-02-01). "Влияние концентраций растворенного неорганического углерода и pH на рост хемолитоавтотрофной эпсилонпротеобактерии Sulfurimonas gotlandica GD1T". MicrobiologyOpen . 3 (1): 80– 88. doi :10.1002/mbo3.153. ISSN  2045-8827. PMC 3937731 . PMID  24376054. 
  8. ^ abcde Мино, Саяка; Накагава, Сатоши; Макита, Хироко; Токи, Томохиро; Миядзаки, Дзюнъити; Зиверт, Стефан М; Польц, Мартин Ф; Инагаки, Фумио; Годфрой, Энн (2017). «Эндемичность космополитных мезофильных хемолитоавтотрофов Sulfurimonas в глубоководных гидротермальных источниках». Журнал ISME . 11 (4): 909–919 . Бибкод : 2017ISMEJ..11..909M. дои : 10.1038/ismej.2016.178. ПМЦ 5364360 . ПМИД  28045457. 
  9. ^ abcdefghijklmnopqrstu v Takai, Ken; Suzuki, Masae; Nakagawa, Satoshi; Miyazaki, Masayuki; Suzuki, Yohey; Inagaki, Fumio; Horikoshi, Koki (2006-01-01). "Sulfurimonas paralvinellae sp. nov., новый мезофильный, окисляющий водород и серу хемолитоавтотроф в пределах Epsilonproteobacteria, выделенный из гнезда полихет глубоководного гидротермального источника, переклассификация Thiomicrospira denitrificans в Sulfurimonas denitrificans comb. nov. и исправленное описание рода Sulfurimonas". Международный журнал систематической и эволюционной микробиологии . 56 (8): 1725–1733 . doi : 10.1099/ijs.0.64255-0 . ПМИД  16901999.
  10. ^ ЯННАШ, ХОЛЬГЕР В.; ВИРСЕН, КАРЛ О.; НЕЛЬСОН, ДУГЛАС К.; РОБЕРТСОН, ЛЕСЛИ А. (1985). "Thiomicrospira crunogena sp. nov., бесцветная сероокисляющая бактерия из глубоководного гидротермального источника". Международный журнал систематической бактериологии . 35 (4): 422– 424. doi : 10.1099/00207713-35-4-422 .
  11. ^ abcd Филлипс, Бреннан; Данбабин, Мэтью; Хеннинг, Брэд; Хауэлл, Кори; ДеЧиккио, Алекс; Флиндерс, Эштон; Келли, Кэтрин; Скотт, Джаррод; Альберт, Саймон (2016). «Исследование «Акульего каньона»: биогеохимические наблюдения подводного вулкана Кавачи (Соломоновы острова)». Океанография . 29 (4): 160– 169. doi : 10.5670/oceanog.2016.85 .
  12. ^ ab Гроте, Яна; Лабренц, Маттиас; Пфайффер, Биргит; Йост, Гюнтер; Юргенс, Клаус (2007-11-01). "Количественное распределение Epsilonproteobacteria и подгруппы Sulfurimonas в пелагических редоксклинах центральной части Балтийского моря". Applied and Environmental Microbiology . 73 (22): 7155– 7161. Bibcode :2007ApEnM..73.7155G. doi :10.1128/AEM.00466-07. ISSN  0099-2240. PMC 2168200 . PMID  17921285. 
  13. ^ abcdefghijklmnopqrst Хан, Ючен; Пернер, Мирьям (2014). «Роль водорода в метаболизме Sulfurimonas denitrificans». PLOS ONE . 9 (8): e106218. Bibcode : 2014PLoSO...9j6218H. doi : 10.1371/journal.pone.0106218 . PMC 4149538. PMID  25170905 . 
  14. ^ abc Гроте, Яна; Шотт, Томас; Брукнер, Кристиан Г.; Глёкнер, Франк Оливер; Йост, Гюнтер; Тилинг, Ханно; Лабренц, Маттиас; Юргенс, Клаус (2012-01-10). «Геном и физиология модельной Epsilonproteobacterium, ответственной за детоксикацию сульфида в зонах истощения морского кислорода». Труды Национальной академии наук . 109 (2): 506– 510. Bibcode : 2012PNAS..109..506G. doi : 10.1073/pnas.1111262109 . ISSN  0027-8424. PMC 3258601. PMID 22203982  . 
  15. ^ AC Parte; et al. "Sulfurimonas". Список названий прокариот со стоянием в номенклатуре (LPSN) . Получено 2023-09-09 .
  16. ^ Sayers; et al. "Sulfurimonas". База данных таксономии Национального центра биотехнологической информации (NCBI) . Получено 2023-09-09 .
  17. ^ "The LTP" . Получено 10 декабря 2024 г. .
  18. ^ "Дерево LTP_all в формате newick" . Получено 10 декабря 2024 г. .
  19. ^ "LTP_10_2024 Release Notes" (PDF) . Получено 10 декабря 2024 г. .
  20. ^ "GTDB release 09-RS220". База данных таксономии генома . Получено 10 мая 2024 г.
  21. ^ "bac120_r220.sp_labels". База данных таксономии генома . Получено 10 мая 2024 г.
  22. ^ "История таксона". База данных таксономии генома . Получено 10 мая 2024 г.
  23. ^ Сюй, Цзяньпин (2006-06-01). "ПРИГЛАШЕННЫЙ ОБЗОР: Микробная экология в эпоху геномики и метагеномики: концепции, инструменты и последние достижения". Молекулярная экология . 15 (7): 1713– 1731. Bibcode :2006MolEc..15.1713X. doi : 10.1111/j.1365-294X.2006.02882.x . ISSN  1365-294X. PMID  16689892. S2CID  16374800.
  24. ^ Кэмпбелл, Барбара Дж.; Энгель, Аннет Саммерс ; Портер, Меган Л.; Такай, Кен (2006-06-01). «Универсальные эпсилон-протеобактерии: ключевые игроки в сульфидных местообитаниях». Nature Reviews. Microbiology . 4 (6): 458– 468. doi :10.1038/nrmicro1414. ISSN  1740-1526. PMID  16652138. S2CID  10479314.
  25. ^ Janosch, Claudia (2015). «Редуктаза серной оксигеназы (Sor) в умеренно термоацидофильных выщелачивающих бактериях: исследования Sulfobacillus thermosulfidooxidans и Acidithiobacillus caldus». Микроорганизмы . 3 (4): 707–724 . doi : 10.3390/microorganisms3040707 . PMC 5023260. PMID  27682113 . 
  26. ^ abcde Хан, Ючен; Пернер, Мирьям (2016). «Потребление сульфида в Sulfurimonas denitrificans и гетерологичная экспрессия его трех гомологов SQR». Американское общество микробиологии . 198 (8): 1260– 1267. doi :10.1128/JB.01021-15. PMC 4859588. PMID  26833414 . 
  27. ^ Gevertz, D.; Telang, AJ; Voordouw, G.; Jenneman, GE (2000-06-01). "Изоляция и характеристика штаммов CVO и FWKO B, двух новых нитратредуцирующих, сульфидокисляющих бактерий, выделенных из нефтяного месторождения рассола". Applied and Environmental Microbiology . 66 (6): 2491– 2501. Bibcode :2000ApEnM..66.2491G. doi :10.1128/aem.66.6.2491-2501.2000. ISSN  0099-2240. PMC 110567 . PMID  10831429. 
  28. ^ Vignais, Paulette M.; Billoud, Bernard (2007-10-01). "Возникновение, классификация и биологическая функция гидрогеназ: обзор". Chemical Reviews . 107 (10): 4206– 4272. doi :10.1021/cr050196r. ISSN  0009-2665. PMID  17927159.
  29. ^ abc Эмерсон, Дэвид; Мойер, Крейг Л. (2010). Микробиология подводных гор . Роквилл, США: Океанография. стр. 151.
  30. ^ abcdefg Андерсон, Рут; Вайлезих, Клаудия; Глаубиц, Сабина; Лабренц, Маттиас; Юргенс, Клаус (2013-05-01). «Влияние выпаса простейших на ключевую бактериальную группу для биогеохимического цикла в пелагических окси/аноксических интерфейсах Балтийского моря». Экологическая микробиология . 15 (5): 1580– 1594. Bibcode : 2013EnvMi..15.1580A. doi : 10.1111/1462-2920.12078. ISSN  1462-2920. PMID  23368413.
  31. ^ abcde Ghosh, Wriddhiman; Dam, Bomba (2009-11-01). "Биохимия и молекулярная биология литотрофного окисления серы таксономически и экологически разнообразными бактериями и археями". FEMS Microbiology Reviews . 33 (6): 999– 1043. doi : 10.1111/j.1574-6976.2009.00187.x . ISSN  1574-6976. PMID  19645821.
  32. ^ abcdef Tian, ​​Huimei; Gao, Peike; Chen, Zhaohui; Li, Yanshu; Li, Yan; Wang, Yansen; Zhou, Jiefang; Li, Guoqiang; Ma, Ting (2017-02-02). "Состав и распространенность сульфатредуцирующих и сероокисляющих микроорганизмов в затопленных нефтяных пластах с различными температурами в Китае". Frontiers in Microbiology . 8 : 143. doi : 10.3389/fmicb.2017.00143 . ISSN  1664-302X. PMC 5288354. PMID  28210252 . 
  33. ^ abcd "Изменения во время экспериментов по исключению хищников с... - Рисунок 3 из 6". ResearchGate . Получено 23.03.2017 .
  34. ^ Ниманн, Хельге; Линке, Питер; Книттель, Катрин; Макферсон, Энрике; Боэтиус, Антье; Брюкманн, Уорнер; Ларвик, Гауте; Валлманн, Клаус; Шахт, Ульрике (2013-10-07). «Поток метана и углерода в бентосную пищевую сеть в холодных просачиваниях — пример из зоны субдукции Коста-Рики». PLOS ONE . 8 (10): e74894. Bibcode : 2013PLoSO...874894N. doi : 10.1371/journal.pone.0074894 . ISSN  1932-6203. PMC 3792092. PMID 24116017  . 
  35. ^ Гроте, Дж.; и др. (2012). «Геном и физиология модельной Epsilonproteobacterium, ответственной за детоксикацию сульфида в зонах истощения кислорода в морской воде». PNAS . 109 (2): 506–510 . Bibcode : 2012PNAS..109..506G. doi : 10.1073 /pnas.1111262109 . PMC 3258601. PMID  22203982. 
Retrieved from "https://en.wikipedia.org/w/index.php?title=Sulfurimonas&oldid=1273216444"