Гопаноиды представляют собой разнообразный подкласс тритерпеноидов с тем же углеводородным скелетом, что и соединение гопан . Эта группа пентациклических молекул, следовательно, относится к простым гопенам, гопанолам и гопанам, но также и к широко функционализированным производным, таким как бактериогопанполиолы (БГП) и гопаноиды, ковалентно присоединенные к липиду А. [ 1] [2]
Первый известный гопаноид, гидроксигопанон, был выделен двумя химиками из Национальной галереи в Лондоне, работавшими над химией даммаровой камеди , натуральной смолы, используемой в качестве лака для картин. [3] Хотя часто предполагается, что гопаноиды производятся только бактериями, их название на самом деле происходит от обилия гопаноидных соединений в смоле растений рода Hopea . В свою очередь, этот род назван в честь Джона Хоупа , первого хранителя Королевского ботанического сада в Эдинбурге .
С момента их первоначального открытия в покрытосеменных растениях гопаноиды были обнаружены в плазматических мембранах бактерий , лишайников , мохообразных , папоротников , тропических деревьев и грибов . [4] Гопаноиды имеют стабильные полициклические структуры, которые хорошо сохраняются в нефтяных резервуарах , горных породах и осадках, что позволяет интерпретировать диагенетические продукты этих молекул как биомаркеры присутствия определенных микробов и, возможно, химических или физических условий во время отложения . [5] Гопаноиды не были обнаружены в археях . [6] [7]
Около 10% секвенированных бактериальных геномов имеют предполагаемый ген shc , кодирующий сквален-гопен циклазу , и предположительно могут вырабатывать гопаноиды, которые, как было показано, играют различные роли в плазматической мембране и могут позволять некоторым организмам адаптироваться в экстремальных условиях. [8] [9]
Поскольку гопаноиды изменяют свойства плазматической мембраны у бактерий, их часто сравнивают со стеролами (например, холестерином ), которые модулируют текучесть мембраны и выполняют другие функции у эукариот . [10] Хотя гопаноиды не устраняют дефицит стеролов, считается, что они увеличивают жесткость мембраны и уменьшают проницаемость. [9] [11] [12] Также было показано, что гаммапротеобактерии и эукариотические организмы, такие как лишайники и бриофиты, производят как стеролы, так и гопаноиды, что позволяет предположить, что эти липиды могут иметь другие различные функции. [4] [13] Примечательно, что способ упаковки гопаноидов в плазматическую мембрану может меняться в зависимости от того, какие функциональные группы прикреплены. Гопаноид бактериогопанететрол принимает поперечную ориентацию в липидных бислоях , но диплоптен локализуется между внутренним и внешним листком, предположительно утолщая мембрану для уменьшения проницаемости. [14]
Гопаноид диплоптерол упорядочивает мембраны, взаимодействуя с липидом А , распространенным мембранным липидом бактерий, способами, аналогичными тому, как холестерин и сфинголипиды взаимодействуют в эукариотических плазматических мембранах. [10] Было показано, что диплоптерол и холестерин способствуют конденсации и ингибируют образование гелевой фазы как в монослоях сфингомиелина , так и в монослоях модифицированного гликанами липида А. Кроме того, как диплоптерол, так и холестерин могут спасать фазовые переходы, зависящие от pH, в монослоях модифицированного гликанами липида А. [10] Роль гопаноидов в мембранно-опосредованной кислотной толерантности дополнительно подтверждается наблюдениями за ингибированным кислотой ростом и морфологическими аномалиями плазматической мембраны у бактерий с дефицитом гопаноидов с мутантными сквален-гопеновыми циклазами. [15] [16]
Гопаноиды вырабатываются несколькими азотфиксирующими бактериями . [9] У актиномицета Frankia гопаноиды в мембранах везикул, специализирующихся на фиксации азота , вероятно, ограничивают проникновение кислорода , делая липидный бислой более плотным и компактным. [17] У Bradyrhizobium гопаноиды, химически связанные с липидом A, увеличивают стабильность и жесткость мембраны, повышая устойчивость к стрессу и внутриклеточное выживание у бобовых Aeschynomene . [18] У цианобактерии Nostoc punctiforme большие количества 2-метилгопаноидов локализуются на внешних мембранах структур выживания, называемых акинетами . [19] В другом примере устойчивости к стрессу гопаноиды в воздушных гифах (спороносных структурах) прокариотических почвенных бактерий Streptomyces , как полагают, минимизируют потерю воды через мембрану в воздух. [20]
Поскольку гопаноиды являются терпеноидами C30 , биосинтез начинается с изопентенилпирофосфата (IPP) и диметилаллилпирофосфата (DMAP), которые объединяются с образованием изопреноидов с более длинной цепью . [2] Синтез этих более мелких предшественников происходит либо по мевалонатному пути , либо по метилэритритол-4-фосфатному пути в зависимости от вида бактерий, хотя последний, как правило, более распространен. [21] DMAP конденсируется с одной молекулой IPP в геранилпирофосфат , который, в свою очередь, конденсируется с другим IPP, образуя фарнезилпирофосфат (FPP) . [2] Скваленсинтаза , кодируемая геном sqs , затем катализирует конденсацию двух молекул FPP в прескваленпирофосфат (PSPP) перед окислением НАДФН для высвобождения сквалена . [22] Однако некоторые бактерии, продуцирующие гопаноиды, лишены скваленсинтазы и вместо этого используют три фермента HpnC, HpnD и HpnE, которые кодируются в опероне hpn со многими другими генами биосинтеза гопаноидов. [23] В этом альтернативном, но, по-видимому, более распространенном пути синтеза сквалена, HpnD высвобождает пирофосфат , поскольку он конденсирует две молекулы FPP в PSPP, который HpnC преобразует в гидроксисквален, потребляя молекулу воды и высвобождая еще один пирофосфат. Затем гидроксисквален восстанавливается до сквалена в реакции дегидратации, опосредованной FAD -зависимым ферментом HpnE. [22]
Затем сквален-гопен циклаза катализирует сложную реакцию циклизации, вовлекая сквален в энергетически выгодную конформацию всех стульев, прежде чем создать 5 циклов, 6 ковалентных связей и 9 хиральных центров на молекуле за один шаг. [24] [25] Этот фермент, кодируемый геном shc ( также называемым hpnF у некоторых бактерий), имеет двойную ⍺-бочку, характерную для биосинтеза терпеноидов [26] и присутствует в клетке в виде монотопного гомодимера , что означает, что пары циклазы встроены в плазматическую мембрану, но не охватывают ее. [24] [27] In vitro этот фермент проявляет беспорядочную субстратную специфичность, также циклизуя 2,3-оксидосквален . [28]
Ароматические остатки в активном центре образуют несколько неблагоприятных карбокатионов на субстрате, которые гасятся быстрой полициклизацией. [25] На последнем подэтапе реакции циклизации, после того как электроны, составляющие терминальную алкеновую связь на сквалене, атаковали гопениловый карбокатион, чтобы закрыть кольцо E, карбкатион C 22 может быть гаситься механизмами, которые приводят к различным гопаноидным продуктам. Нуклеофильная атака воды даст диплоптерол, тогда как депротонирование на соседнем углероде приведет к образованию одного из нескольких изомеров гопена, часто диплоптена. [4]
После циклизации гопаноиды часто модифицируются ферментами биосинтеза гопаноидов, кодируемыми генами в том же опероне, что и shc , hpn . [29] Например, радикальный белок SAM HpnH добавляет аденозиновую группу к диплоптену, образуя расширенный гопаноидный аденозилгопан C 35 , который затем может быть дополнительно функционализирован другими продуктами гена hpn . [30] HpnG катализирует удаление аденина из аденозилгопана с образованием рибозилгопана, который реагирует с образованием бактериогопанеттрола (BHT) в реакции, опосредованной неизвестным ферментом. [31] Дополнительные модификации могут происходить, когда HpnO аминирует концевой гидроксил на BHT, образуя аминобактериогопанетриол, или когда гликозилтрансфераза HpnI преобразует BHT в N-ацетилглюкозаминил-BHT. [32] В последовательности, связанный с биосинтезом гопаноида белок HpnK опосредует деацетилирование до глюкозаминил-BHT, из которого радикальный белок SAM HpnJ генерирует циклитоловый эфир. [32]
Важно отметить, что гопаноиды C 30 и C 35 могут быть метилированы в положениях C 2 и C 3 радикальными метилтрансферазами SAM HpnP и HpnR соответственно. [33] [34] Эти два метилирования особенно геостабильны по сравнению с модификациями боковой цепи и развлекали геобиологов на протяжении десятилетий. [9]
В биосинтетическом пути, эксклюзивном для некоторых бактерий, фермент тетрахиманолсинтаза катализирует превращение гопаноида диплоптена в пентациклический тритерпеноид тетрахиманол . У эукариот, таких как Tetrahymena , тетрахиманол вместо этого синтезируется непосредственно из сквалена циклазой, не имеющей гомологии с бактериальной тетрахиманолсинтазой. [35]
Гопаноиды, как было подсчитано, являются наиболее распространенными природными продуктами на Земле, остающимися в органической фракции всех осадков, независимо от возраста, происхождения или природы. Общее количество на Земле было оценено как 10 x 10 18 грамм (10 12 тонн) в 1992 году. [36] Биомолекулы, такие как ДНК и белки, деградируют во время диагенеза , но полициклические липиды сохраняются в окружающей среде в течение геологических временных масштабов из-за их слитых, стабильных структур. [37] Хотя гопаноиды и стерины восстанавливаются до гопанов и стеранов во время осаждения, эти диагенетические продукты все еще могут быть полезными биомаркерами или молекулярными ископаемыми для изучения совместной эволюции ранней жизни и Земли. [37] [38]
В настоящее время старейшими обнаруженными неоспоримыми окаменелостями тритерпеноидов являются мезопротерозойские окенан , стеран и метилгопан из бассейна возрастом 1,64 млрд лет (миллиард лет) в Австралии. [39] Однако анализ молекулярных часов показывает, что самые ранние стерины, вероятно, были образованы около 2,3 млрд лет назад, примерно в то же время, что и Великое окислительное событие , а синтез гопаноидов возник еще раньше. [40]
По нескольким причинам предполагалось, что гопаноиды и сквален-гопеновые циклазы являются более древними, чем стерины и оксидоскваленовые циклазы. Во-первых, диплоптерол синтезируется, когда вода гасит карбокатион C22, образованный во время полициклизации. Это указывает на то, что гопаноиды могут быть получены без молекулярного кислорода и могли служить суррогатом стерола до того, как атмосфера накопила кислород, который реагирует со скваленом в реакции, катализируемой скваленмонооксигеназой во время биосинтеза стерола. [1] Кроме того, сквален связывается со сквален-гопеновыми циклазами в низкоэнергетической конформации «все кресло», в то время как оксидосквален циклизуется в более напряженной конформации «кресло-лодка-кресло-лодка». [4] [41] Сквален-гопеновые циклазы также демонстрируют большую субстратную неоднородность, поскольку они циклизуют оксидосквален in vitro , что заставило некоторых ученых выдвинуть гипотезу, что они являются эволюционными предшественниками оксидоскваленовых циклаз. [41] Другие ученые предположили, что сквален-гопеновые и оксидоскваленовые циклазы произошли от общего предка, предполагаемой бактериальной циклазы, которая могла бы производить трициклический малабариканоид или тетрациклический даммараноид . [1] [42]
2-метилгопаны, часто определяемые как индекс 2-α-метилгопана, были впервые предложены в качестве биомаркера оксигенного фотосинтеза Роджером Саммонсом и его коллегами после открытия предшественников липидов, 2-метилгопанолов, в культурах и матах цианобактерий . [43] Последующее открытие 2-α-метилгопанов, предположительно из фотосинтетических цианобактерий в сланцах возрастом 2,7 млрд лет из кратона Пилбара в Западной Австралии, предположило наличие разрыва в 400 млн лет (миллионов лет) между эволюцией оксигенного метаболизма и Великим окислительным событием. [44] Однако эти выводы были позже отвергнуты из-за потенциального загрязнения современными углеводородами. [45]
Предполагаемое присутствие цианобактерий на основе обильных 2-метилгопанов использовалось для объяснения отложения черных сланцев во время аптских и сеноман-туронских океанических аноксических событий (OAEs) и связанных с ними изотопных сигнатур 15 N, указывающих на фиксацию N 2. [46] Напротив, значения индекса 2-α-метилгопана относительно низкие в аналогичных франских и фаменских отложениях, соответствующих событиям Келлвассера , [47] хотя более высокие уровни были зарегистрированы в более поздних нижнефаменских разрезах. [48]
Статус 2-метилгопаноидов как биомаркера цианобактерий был поставлен под сомнение рядом микробиологических открытий. Было показано, что Geobacter sexualreducens синтезирует разнообразные гопанолы, хотя и не 2-метилгопанолы, при выращивании в строго анаэробных условиях. [8] Кроме того, было обнаружено, что аноксигенный фототроф Rhodopseudomonas palustris производит 2-метил-BHP только в аноксических условиях. [49] Это последнее открытие также привело к идентификации гена, кодирующего ключевую метилтрансферазу HpnP. [33] hpnP впоследствии был идентифицирован в ацидобактериях и многочисленных альфапротеобактериях , а филогенетический анализ гена пришел к выводу, что он возник в альфапротеобактериях и был приобретен цианобактериями и ацидобактериотами посредством горизонтального переноса генов . [50]
Среди цианобактерий продукция гопаноидов, как правило, ограничивается наземными цианобактериями. Среди морских цианобактерий эксперименты по культивированию, проведенные Хелен Талбот и коллегами, пришли к выводу, что только два морских вида – Trichodesmium и Crocosphaera – продуцируют бактериогопанполиолы. [51] Более поздний поиск hpnP на основе генов в доступных геномах цианобактерий и собранных метагеномом геномах (MAG) привел к аналогичным выводам, идентифицировав ген примерно у 30% наземных и пресноводных видов и только у одного из 739 морских геномов цианобактерий и MAG. [52] Кроме того, Nostoc punctiforme продуцирует наибольшее количество 2-метилгопаноидов при дифференциации в акинеты . Эти устойчивые к холоду и высыханию клеточные структуры находятся в состоянии покоя и, следовательно, не фотосинтетически активны, что еще больше оспаривает связь между 2-метилгопанами и оксигенным фотосинтезом. [19]
Исследования, демонстрирующие, что нитрит-окисляющие бактерии (NOB) Nitrobacter vulgaris увеличивают производство 2-метилгопаноидов в 33 раза при добавлении кобаламина , способствовали нецианобактериальному объяснению наблюдаемого обилия 2-метилгопанов, связанных с меловыми OAE. Феликс Эллинг и коллеги предполагают, что опрокидывающая циркуляция вынесла на поверхность глубокие воды, богатые аммиаком и кобальтом, что способствовало аэробному окислению нитрита и синтезу кобаламина соответственно. Эта модель также рассматривает заметный недостаток 2-метилгопанов, связанный с событиями в средиземноморском сапропеле и в современных отложениях Черного моря . Поскольку обе среды характеризуются гораздо меньшим подъемом глубинных вод, 2-метилгопаноидные NOB, такие как N. vulgaris, вытесняются NOB с более высоким сродством к нитриту и анаммокс- бактериями. [52]
Исследование окружающей среды, проведенное Джессикой Риччи и соавторами с использованием метагеномов и библиотек клонов, выявило значительную корреляцию между микробными сообществами, связанными с растениями, и присутствием hpnP , на основании чего они предполагают, что 2-метилгопаноиды являются биомаркером для сидячих микробных сообществ с высокой осмолярностью и низким содержанием кислорода и фиксированного азота. [53]
3-метилгопаноиды исторически ассоциировались с аэробной метанотрофией на основе экспериментов по культивированию [54] и совместной встречаемости с аэробными метанотрофами в окружающей среде. [55] Таким образом, присутствие 3-метилгопанов вместе с истощением 13 C считаются маркерами древней аэробной метанотрофии. [34] Однако уже несколько десятилетий известно , что уксуснокислые бактерии также производят 2-метилгопаноиды. [54] Кроме того, после идентификации hpnR , гена, ответственного за метилирование гопаноидов в положении C 3 , Паула Веландер и Роджер Саммонс идентифицировали предполагаемые гомологи hpnR у представителей альфа- , бета- и гамма-протеобактерий , актиномицетов , нитроспирот , кандидата типа NC10 и ацидобактерий , а также в трех метагеномах. Таким образом, Веландер и Саммонс приходят к выводу, что 3-метилгопаноиды сами по себе не могут служить доказательством аэробной метанотрофии. [34]
Элегантный механизм, лежащий в основе протоназной активности сквален-гопен циклазы, был оценен и адаптирован инженерами-химиками из Университета Штутгарта, Германия. Активная разработка сайта привела к потере способности фермента образовывать гопаноиды, но позволила использовать кислотный катализ Бренстеда для стереоселективной циклизации монотерпеноидов гераниола , эпоксигераниола и цитронеллаля . [56]
Применение гопаноидов и азотфиксаторов, продуцирующих гопаноиды, в почве было предложено и запатентовано как метод биоудобрения, который повышает устойчивость микробных симбионтов, связанных с растениями, к окружающей среде, включая азотфиксирующие бактерии, которые необходимы для преобразования атмосферного азота в растворимые формы, доступные для сельскохозяйственных культур. [57]
В ходе более поздних исследований взаимодействия диплоптерола и липида А в Methylobacterium extorquens было обнаружено, что транспорт нескольких лекарственных средств является процессом, зависящим от гопаноидов. Мутанты циклазы сквален-гопена, полученные из дикого типа, способного к оттоку нескольких лекарственных средств , механизму устойчивости к лекарственным средствам, опосредованному интегральными транспортными белками, утратили способность выполнять как транспорт нескольких лекарственных средств, так и синтез гопаноидов. [12] Исследователи указывают, что это может быть связано с прямой регуляцией транспортных белков гопаноидами или косвенно, путем изменения порядка мембран таким образом, что нарушается транспортная система. [12]