Грибковый прион — это прион , который заражает хозяев , являющихся грибами . Грибковые прионы — это встречающиеся в природе белки , которые могут переключаться между несколькими структурно различными конформациями, по крайней мере одна из которых является саморазмножающейся и передаваемой другим прионам. Эта передача состояния белка представляет собой эпигенетический феномен, при котором информация кодируется в самой структуре белка, а не в нуклеиновых кислотах. Несколько прионообразующих белков были идентифицированы в грибах, в первую очередь в дрожжах Saccharomyces cerevisiae . Эти грибковые прионы обычно считаются доброкачественными, а в некоторых случаях даже дают организму селективное преимущество. [1]
Грибковые прионы предоставили модель для понимания болезнетворных прионов млекопитающих . Изучение грибковых прионов привело к характеристике особенностей последовательности и механизмов, которые позволяют прионным доменам переключаться между функциональным и амилоидобразующим состояниями.
Прионы образуются переносимыми, передаваемыми прионными доменами, которые часто обогащены остатками аспарагина, глутамина, тирозина и глицина. Когда репортерный белок сливается с прионным доменом, он образует химерный белок, демонстрирующий конформационное переключение, характерное для прионов. Между тем, удаление этого прионного домена предотвращает прионогенез. Это говорит о том, что эти прионные домены на самом деле переносимы и являются единственным инициатором прионогенеза. Это подтверждает гипотезу только белка. [ необходима цитата ]
Недавнее исследование кандидатов на прионные домены в S. cerevisiae обнаружило несколько специфических особенностей последовательностей, которые были общими для белков, демонстрирующих свойства агрегации и самошаблонной структуры. Например, белки, которые агрегировали, имели кандидатные прионные домены, которые были более обогащены аспарагином, в то время как неагрегирующие домены были более обогащены глутамином и заряженными пептидами. Также были получены доказательства того, что размещение заряженных пептидов, которые предотвращают образование амилоида, таких как пролин, важно в прионогенезе. Это открытие специфичности последовательностей было отходом от предыдущей работы, которая предполагала, что единственным определяющим фактором в прионогенезе было общее распределение пептидов. [2]
Podospora anserina — нитчатый гриб. Генетически совместимые колонии этого гриба могут сливаться и делиться клеточным содержимым, таким как питательные вещества и цитоплазма . Существует естественная система защитных белков «несовместимости», которая предотвращает беспорядочное совместное использование между неродственными колониями. Один из таких белков, называемый HET-s, принимает прионоподобную форму для правильного функционирования. [3] [4] Прионная форма HET-s быстро распространяется по клеточной сети колонии и может преобразовывать неприонную форму белка в прионное состояние после слияния совместимых колоний. [5] Однако, когда несовместимая колония пытается слиться с колонией, содержащей прион, прион заставляет клетки-«захватчики» погибать, гарантируя, что только родственные колонии получат выгоду от совместного использования ресурсов.
В 1965 году Брайан Кокс, генетик, работавший с дрожжами Saccharomyces cerevisiae , описал генетический признак (названный [PSI+]) с необычным типом наследования . Первоначальное открытие [PSI+] было сделано в штамме, ауксотрофном по аденину из-за бессмысленной мутации. [6] Несмотря на многолетние усилия, Кокс не смог идентифицировать обычную мутацию , которая была бы ответственна за признак [PSI+]. В 1994 году генетик дрожжей Рид Викнер правильно предположил, что [PSI+], а также другой загадочный наследуемый признак, [URE3], возникли из-за прионных форм нормальных клеточных белков , Sup35p и Ure2p , соответственно. [7] Названия прионов дрожжей часто заключаются в скобки, чтобы указать, что они неменделируют при переходе в клетки-потомки, как плазмидная и митохондриальная ДНК. [ необходима цитата ]
Дальнейшие исследования показали, что [PSI+] является результатом самораспространяющейся неправильно свернутой формы Sup35p (белок длиной 201 аминокислота), что является важным фактором для терминации трансляции во время синтеза белка . [8] В клетках дрожжей [PSI+] белок Sup35 образует нитевидные агрегаты, известные как амилоид . Конформация амилоида является самораспространяющейся и представляет собой состояние приона. Для белка Sup35 существуют удивительно различные состояния приона с различными свойствами, и эти различия являются самораспространяющимися. [9] Другие прионы также могут образовывать различные варианты (или штаммы). [10] Считается, что подавление бессмысленных мутаций в клетках [PSI+] происходит из-за уменьшенного количества функционального Sup35, поскольку большая часть белка находится в амилоидном состоянии. Белок Sup35 собирается в амилоид через аминоконцевой прионный домен. Структура основана на укладке прионных доменов в регистровую и параллельную конформацию бета-слоя. [11]
Важным открытием Черноффа, в сотрудничестве между лабораториями Либмана и Линдквиста, было то, что для поддержания [PSI+] требуется шаперон белка . [12] Поскольку единственная функция шаперонов заключается в том, чтобы помогать белкам правильно складываться, это открытие решительно поддержало гипотезу Викнера о том, что [PSI+] является наследуемым состоянием белка (т. е. прионом). Аналогичным образом, это открытие также предоставило доказательства общей гипотезы о том, что прионы, включая первоначально предложенный прион млекопитающих PrP , являются наследуемыми формами белка. Из-за действия шаперонов, особенно Hsp104, белки, кодирующие [PSI+] и [URE3], могут преобразовываться из не-прионных в прионные формы. По этой причине прионы дрожжей являются хорошими моделями для изучения таких факторов, как шапероны, которые влияют на агрегацию белков. [10] Кроме того, IPOD является субклеточным сайтом, в котором амилоидогенные белки секвестрируются в дрожжах, и где прионы, такие как [PSI+], могут подвергаться созреванию. [13] Таким образом, прионы также служат субстратами для понимания внутриклеточной обработки белковых агрегатов, таких как амилоид. [ необходима цитата ]
Лаборатории обычно идентифицируют [PSI+] по росту штамма, ауксотрофного по аденину, на средах, не содержащих аденин, подобно тем, что использовали Кокс и др. Эти штаммы не могут синтезировать аденин из-за бессмысленной мутации в одном из ферментов, участвующих в биосинтетическом пути. Когда штамм выращивается на среде с дрожжевым экстрактом/декстрозой/пептоном (YPD), заблокированный путь приводит к накоплению промежуточного соединения красного цвета, которое экспортируется из клетки из-за его токсичности. Таким образом, цвет является альтернативным методом идентификации [PSI+] — штаммы [PSI+] имеют белый или розоватый цвет, а штаммы [psi-] — красный. Третий метод идентификации [PSI+] заключается в наличии Sup35 в осажденной фракции клеточного лизата.
При воздействии определенных неблагоприятных условий в некоторых генетических фонах клетки [PSI+] на самом деле чувствуют себя лучше, чем их свободные от прионов братья и сестры; [14] это открытие предполагает, что способность принимать форму приона [PSI+] может быть результатом положительного эволюционного отбора . [15] Было высказано предположение, что способность преобразовываться между инфицированными прионами и свободными от прионов формами действует как эволюционный конденсатор , позволяющий дрожжам быстро и обратимо адаптироваться в изменчивых условиях. Тем не менее, Рид Викнер утверждает, что [URE3] и [PSI+] являются заболеваниями, [16] хотя это утверждение было оспорено с использованием теоретических популяционно-генетических моделей. [17]
Термин [PIN+] был придуман Либманом и коллегами из Psi-INducibility для описания генетического требования для образования приона [PSI+]. [18] Они показали, что [PIN+] требуется для индукции большинства вариантов приона [PSI+]. Позже они идентифицировали [PIN+] как прионную форму белка RNQ1 [19] [20] [21] Более точное название [RNQ+] теперь иногда используется, поскольку другие факторы или прионы также могут иметь фенотип, индуцирующий Psi. [ необходима цитата ]
Неприонная функция Rnq1 окончательно не охарактеризована. Хотя причины этого плохо изучены, предполагается, что агрегаты [PIN+] могут действовать как «семена» для полимеризации [PSI+] и других прионов. [22] [23] [24] Основой приона [PIN+] является амилоидная форма Rnq1, расположенная в параллельных бета-слоях в регистре, как амилоидная форма Sup35. [25] Из-за схожих амилоидных структур прион [PIN+] может способствовать формированию [PSI+] посредством механизма шаблонизации. [ необходима цитата ]
Были созданы две модифицированные версии Sup35, которые могут индуцировать PSI+ в отсутствие [PIN+] при сверхэкспрессии. Одна версия была создана путем переваривания гена рестриктазой Bal2 , что приводит к образованию белка, состоящего только из частей M и N Sup35. [26] Другая версия представляет собой слияние Sup35NM с HPR, белком рецептора мембраны человека. [ требуется цитата ]
Прионы действуют как альтернативная форма неменделевского, фенотипического наследования из-за их способности к самообразованию. Это делает прионы метастабильным, доминирующим механизмом наследования, который полагается исключительно на конформацию белка. Многие белки, содержащие прионные домены, играют роль в экспрессии генов или связывании РНК, и именно так альтернативная конформация может привести к фенотипической изменчивости. Например, состояние [psi-] Sup35 в дрожжах является фактором терминации трансляции. Когда Sup35 претерпевает конформационное изменение в состояние приона [PSI+], он образует амилоидные фибриллы и секвестрируется, что приводит к более частому считыванию стоп-кодона и развитию новых фенотипов. С более чем 20 прионоподобными доменами, идентифицированными в дрожжах, это дает возможность для значительного количества вариаций из одного протеома. Было высказано предположение, что эта повышенная вариация дает селективное преимущество популяции генетически однородных дрожжей. [27]
Белок | Природный хозяин | Нормальное функционирование | Прионовое государство | Фенотип приона | Год определения |
---|---|---|---|---|---|
Уре2 | Сахаромицеты cerevisiae | Репрессор катаболита азота | [УРЭ3] | Рост на бедных азотом источниках | 1994 |
Sup35 | Сахаромицеты cerevisiae | Фактор прекращения трансляции | [ПСИ+] | Повышенный уровень подавления абсурда | 1994 |
HET-S | Подоспора гусиная | Регулирует гетерокарионную несовместимость | [Гет-с] | Образование гетерокарионов между несовместимыми штаммами | 1997 |
вакуолярная протеаза B | Сахаромицеты cerevisiae | смерть в стационарной фазе, сбой в мейозе | [β] | неспособность расщеплять клеточные белки при недостатке азота | 2003 |
MAP-киназы | Подоспора гусиная | повышенная пигментация, медленный рост | [С] | 2006 | |
Rnq1p | Сахаромицеты cerevisiae | Фактор белковой матрицы | [RNQ+], [PIN+] | Способствует агрегации других прионов | 2000 |
Мка1* | Сахаромицеты cerevisiae | Предполагаемая дрожжевая каспаза | [МКА+] | Неизвестный | 2008 |
Swi1 | Сахаромицеты cerevisiae | Ремоделирование хроматина | [SWI+] | Слабый рост некоторых источников углерода | 2008 |
Цикл8 | Сахаромицеты cerevisiae | Транскрипционный репрессор | [ОКТ+] | Транскрипционная дерепрессия нескольких генов | 2009 |
Mot3 | Сахаромицеты cerevisiae | Ядерный фактор транскрипции | [МОТ3+] | Транскрипционная дерепрессия анаэробных генов | 2009 |
Pma1+Std1 [28] | Сахаромицеты cerevisiae | Pma1 = основной протонный насос плазматической мембраны, Std1 = второстепенный насос | [ГАР+] | Устойчив к репрессии, связанной с глюкозой | 2009 |
Sfp1 [29] | Сахаромицеты cerevisiae | Глобальный регулятор транскрипции | [Интернет-провайдер+] | Антисупрессор некоторых мутаций sup35 | 2010 |
Мод5 [30] | Сахаромицеты cerevisiae | [МОД+] | 2012 |
[*Оригинальная статья, в которой предполагалось, что Mca1 является прионом, была отозвана [31] ]