Перетасовка ДНК , также известная как молекулярная селекция, представляет собой метод случайной рекомбинации in vitro для генерации мутантных генов для направленной эволюции и для обеспечения быстрого увеличения размера библиотеки ДНК . [1] [3] [4] [5] [6] [7] [8] [9] Три процедуры для выполнения перетасовки ДНК — это молекулярная селекция, которая основана на гомологичной рекомбинации или сходстве последовательностей ДНК, рестрикционные ферменты , которые полагаются на общие сайты рестрикции , и негомологичная случайная рекомбинация, которая требует использования шпилек . [1] Во всех этих методах родительские гены фрагментируются, а затем рекомбинируются. [1] [4]
Перетасовка ДНК использует случайную рекомбинацию в отличие от сайт-направленного мутагенеза для того, чтобы генерировать белки с уникальными атрибутами или комбинациями желаемых характеристик, закодированных в родительских генах, таких как термостабильность и высокая активность. [1] [8] Потенциал перетасовки ДНК для производства новых белков иллюстрируется рисунком, показанным справа, который демонстрирует разницу между точечными мутациями, вставками и делециями, и перетасовкой ДНК. [1] В частности, этот рисунок показывает использование перетасовки ДНК на двух родительских генах, что позволяет генерировать рекомбинантные белки, которые имеют случайную комбинацию последовательностей из каждого родительского гена. [1] Это отличается от точечных мутаций , в которых один нуклеотид был изменен, вставлен или удален, и вставок или делеций, где последовательность нуклеотидов была добавлена или удалена, соответственно. [1] [2] В результате случайной рекомбинации перетасовка ДНК способна производить белки с новыми качествами или несколькими выгодными характеристиками, полученными из родительских генов. [1] [4]
В 1994 году Виллем П.К. Штеммер опубликовал первую статью о перетасовке ДНК. [7] С момента появления этой техники перетасовка ДНК применялась к белковым и низкомолекулярным фармацевтическим препаратам, биоремедиации , вакцинам , генной терапии и эволюционирующим вирусам. [3] [10] [11] [12] Другие методы, которые дают результаты, схожие с перетасовкой ДНК, включают случайный химерагенез на временных матрицах (RACHITT), случайную печать in vitro рекомбинации (RPR) и процесс ступенчатого расширения (StEP). [4] [7] [13]
Перетасовка ДНК методом молекулярной селекции была впервые описана в 1994 году Виллемом П. С. Штеммером. [1] [7] Он начал с фрагментации гена β-лактамазы , который был амплифицирован с помощью полимеразной цепной реакции (ПЦР), с использованием ДНКазы I , которая случайным образом расщепляет ДНК. [14] [15] Затем он завершил модифицированную реакцию ПЦР, в которой праймеры не использовались, что привело к отжигу гомологичных фрагментов или фрагментов со схожими последовательностями. [14] Наконец, эти фрагменты были амплифицированы с помощью ПЦР. [14] Штеммер сообщил, что использование перетасовки ДНК в сочетании с обратным скрещиванием привело к устранению несущественных мутаций и увеличению производства антибиотика цефотаксима . [ 14] Он также подчеркнул потенциал молекулярной эволюции с помощью перетасовки ДНК. [16] В частности, он указал, что этот метод может быть использован для модификации белков. [16]
С тех пор перетасовка ДНК применялась для создания библиотек гибридных или химерных генов и вдохновила на семейную перетасовку, которая определяется как использование родственных генов в перетасовке ДНК. [17] [18] [19] Кроме того, перетасовка ДНК применялась к белковым и низкомолекулярным фармацевтическим препаратам, биоремедиации, генной терапии, вакцинам и эволюционировавшим вирусам. [3] [10] [11] [12] [20]
Сначала ДНКаза I используется для фрагментации набора родительских генов на сегменты двухцепочечной ДНК размером от 10-50 п.н. до более 1 к.п.н. [4] [16] Затем следует ПЦР без праймеров. [14] В ПЦР фрагменты ДНК с достаточно перекрывающимися последовательностями будут отжигаться друг с другом, а затем удлиняться ДНК-полимеразой . [1] [4] [5] [7] [14] [16] [21] Удлинение ПЦР не произойдет, если только не будет последовательностей ДНК с высоким сходством. [1] Важными факторами, влияющими на последовательности, синтезируемые при перетасовке ДНК, являются ДНК-полимераза, концентрации солей и температура отжига. [10] Например, использование Taq-полимеразы для амплификации фрагмента размером 1 к.п.н. в ПЦР из 20 циклов приводит к получению от 33% до 98% продуктов, содержащих одну или несколько мутаций. [21]
Для амплификации фрагментов можно использовать несколько циклов ПЦР-расширения. [1] [4] [5] [7] [14] [16] [21] Добавление праймеров, которые разработаны так, чтобы быть комплементарными концам расширенных фрагментов, добавляется для дальнейшей амплификации последовательностей с помощью другой ПЦР. [1] [14] [21] Праймеры можно выбирать так, чтобы на их 5'-концах были добавлены дополнительные последовательности, такие как последовательности для сайтов распознавания рестриктаз , которые необходимы для лигирования в клонирующий вектор . [1] [14]
Можно рекомбинировать части родительских генов для создания гибридов или химерных форм с уникальными свойствами, отсюда и термин «перетасовка ДНК». [22] Недостатком молекулярной селекции является требование сходства между последовательностями, что вдохновило на разработку других процедур перетасовки ДНК. [1]
Для фрагментации родительских генов используются рестриктазы. [1] [21] Затем фрагменты соединяются вместе посредством лигирования, которое можно выполнить с помощью ДНК-лигазы . [1] Например, если два родительских гена имеют три сайта рестрикции, можно создать четырнадцать различных полноразмерных гибридных генов. [1] Количество уникальных полноразмерных гибридов определяется тем фактом, что ген с тремя сайтами рестрикции можно разбить на четыре фрагмента . [1] Таким образом, существует два варианта для каждой из четырех позиций за вычетом комбинаций, которые воссоздали бы два родительских гена, что дает 2 4 - 2 = 14 различных полноразмерных гибридных генов . [1]
Главное отличие между перетасовкой ДНК с помощью рестриктаз и молекулярной селекцией заключается в том, что молекулярная селекция опирается на гомологию последовательностей для отжига цепей и ПЦР для удлинения, тогда как при использовании рестриктаз создаются концы фрагментов, которые можно лигировать. [1] Главные преимущества использования рестриктаз включают контроль над количеством событий рекомбинации и отсутствие необходимости в амплификации ПЦР. [1] [23] Главным недостатком является необходимость общих участков рестриктаз. [1]
Для создания сегментов размером от 10-50 п.н. до более 1 к.б. используется ДНКаза I. [4] [16] [24] Концы фрагментов затупляются путем добавления ДНК-полимеразы T4. [1] [24] Затупление фрагментов важно для объединения фрагментов, поскольку несовместимые липкие концы или выступы предотвращают соединение концов. [1] [25] [26] Затем к смеси фрагментов добавляются шпильки с определенным сайтом рестрикции. [1 ] [24] Затем для лигирования фрагментов с образованием расширенных последовательностей используется ДНК-лигаза T4. [1] [24] Лигирование шпилек с фрагментами ограничивает длину расширенных последовательностей, предотвращая добавление дополнительных фрагментов. [1] Наконец, для удаления петель шпилек используется фермент рестрикции. [1] [24]
Негомологичная случайная рекомбинация отличается от молекулярной селекции тем, что гомология лигированных последовательностей не является необходимой, что является преимуществом. [1] Однако , поскольку этот процесс рекомбинирует фрагменты случайным образом, существует вероятность того, что большая часть рекомбинированных последовательностей ДНК не будет иметь желаемых характеристик, что является недостатком. [1] Негомологичная случайная рекомбинация также отличается от использования рестриктаз для перетасовки ДНК тем, что общие сайты рестриктаз на родительских генах не требуются, а использование шпилек является необходимым, что демонстрирует преимущество и недостаток негомологичной случайной рекомбинации по сравнению с использованием рестриктаз, соответственно. [1]
Поскольку перетасовка ДНК обеспечивает рекомбинацию генов, активность белков может быть повышена. [3] [20] Например, перетасовка ДНК использовалась для повышения эффективности фаговых рекомбинантных интерферонов на мышиных и человеческих клетках. [3] Кроме того, улучшение зеленого флуоресцентного белка (GFP) было достигнуто с помощью перетасовки ДНК путем молекулярной селекции, поскольку был получен сигнал в 45 раз больший, чем стандарт для флуоресценции всей клетки. [20] Более того, синтез различных генов также может привести к производству белков с новыми свойствами. [1] Поэтому перетасовка ДНК использовалась для разработки белков для детоксикации химических веществ. [3] [27] Например, метод гомологичной рекомбинации перетасовки ДНК путем молекулярной селекции использовался для улучшения детоксикации атразина и арсената . [3] [27]
Перетасовка ДНК также использовалась для улучшения деградации биологических загрязнителей. [12] [28] В частности, рекомбинантный штамм E. coli был создан с использованием перетасовки ДНК путем молекулярной селекции для биоремедиации трихлорэтилена (ТХЭ), потенциального канцерогена , который менее восприимчив к токсичным эпоксидным промежуточным продуктам. [12] [21] [28]
Возможность выбора желаемых рекомбинантов с помощью перетасовки ДНК использовалась в сочетании со стратегиями скрининга для улучшения вакцин-кандидатов против инфекций с акцентом на улучшение иммуногенности , производства вакцины, стабильности и перекрестной реактивности к нескольким штаммам патогенов. [3] [10] Были исследованы некоторые вакцины-кандидаты против Plasmodium falciparum , вируса денге , энцефалитических альфавирусов (включая: VEEV , WEEV и EEEV ), вируса иммунодефицита человека-1 (ВИЧ-1) и вируса гепатита B (HBV). [10]
Требования к генной терапии человека включают высокую чистоту, высокий титр и стабильность. [11] Перетасовка ДНК позволяет создавать ретровирусные векторы с этими характеристиками. [11] Например, перетасовка ДНК с молекулярной селекцией была применена к шести штаммам экотропного вируса лейкемии мышей (MLV), что привело к составлению обширной библиотеки рекомбинантных ретровирусов и идентификации множественных клонов с повышенной стабильностью. [11] Кроме того, применение перетасовки ДНК с молекулярной селекцией на множественных родительских векторах аденоассоциированного вируса (AAV) было использовано для создания библиотеки из десяти миллионов химер. [29] Полученные выгодные характеристики включают повышенную устойчивость к человеческому внутривенному иммуноглобулину (IVIG) и выработку клеточного тропизма в новых вирусах. [29]
Хотя перетасовка ДНК стала полезным методом для случайной рекомбинации, для этой цели были разработаны и другие методы, включая RACHITT, RPR и StEP. [4] [13] Ниже приведены некоторые преимущества и недостатки этих других методов рекомбинации. [4] [7] [13]
В RACHITT фрагменты одноцепочечных (ss) родительских генов отжигаются на матрице ss, что приводит к уменьшению несоответствий, что является преимуществом. [13] Кроме того, RACHIIT позволяет рекомбинировать гены с низким сходством последовательностей. [7] Однако основным недостатком является подготовка фрагментов ss родительских генов и матрицы ss. [7] [13]
RPR использует случайные праймеры. [30] Эти случайные праймеры отжигаются с шаблонной ДНК и затем удлиняются фрагментом Кленова . [30] Затем шаблоны удаляются, а фрагменты собираются по гомологии в процессе, похожем на ПЦР. [30] Некоторые основные преимущества включают меньшую потребность в родительских генах из-за использования шаблонов ss и повышенное разнообразие последовательностей из-за неправильного старта и неправильного включения. [7] [30] Одним из недостатков RPR является подготовка шаблона. [30]
В StEP для создания полноразмерных последовательностей используются короткие циклы отжига праймера на матрице и удлинения полимеразой. [31] [32] Основными преимуществами StEP являются простота метода и отсутствие очистки фрагментов. [7] [13] Недостатками StEP являются то, что он занимает много времени и требует гомологии последовательностей. [7] [13]
{{cite book}}
: CS1 maint: отсутствует местоположение издателя ( ссылка ){{cite book}}
: CS1 maint: others (link)