Кобаламин рибосвитч | |
---|---|
Идентификаторы | |
Символ | Кобаламин |
Рфам | РФ00174 |
Другие данные | |
Тип РНК | Цис-рег ; рибосвитч |
Домены | Бактерии |
ТАК | SO:0000035 |
Структуры PDB | ПДБе 6ВМЙ |
Кобаламиновый рибосвитч – это цис-регуляторный элемент , который широко распространен в 5'-нетранслируемых областях генов , связанных с витамином B12 ( кобаламином), у бактерий . [1]
Рибопереключатели кобаламина (витамина B 12 , кофермента B 12 ) представляют собой структурированные элементы РНК, которые регулируют смежные гены, связанные с метаболизмом кобаламина, в ответ на связывание кобаламина. Рибопереключатели представляют собой генетические регуляторные элементы на основе РНК, присутствующие в 5'-нетранслируемой области (5'UTR) преимущественно бактериальной РНК. Эти переключатели связываются с лигандом , который обычно является метаболитом , с высоким сродством и специфичностью. Связывание лиганда опосредует аллостерическую перестройку структуры мРНК, и это приводит к модуляции экспрессии генов или трансляции мРНК с получением белка. Рибопереключатель кобаламина, наряду с большинством других рибопереключателей, является цис-регуляторным . Это означает, что они регулируют гены, участвующие в тех же метаболических путях, что и метаболит, который они связывают, что создает регуляцию через отрицательную обратную связь . Рибосвитчи группируются в классы по лиганду, который они связывают, поскольку домен связывания лиганда или аптамера высококонсервативен у разных видов. Рибосвитчи, включая рибосвитч кобаламина, в последнее время привлекли большое внимание из-за своего терапевтического и синтетического потенциала, [2], а также своих интересных структурных свойств. [3] [4] [5] По состоянию на 2019 год рибосвитчи кобаламина были идентифицированы у более чем 5000 видов бактерий. [2]
Рибосвитчи кобаламина связывают кобаламин (витамин B12), который является сложным ферментным кофактором, состоящим из корринового кольца, координированного с ионом кобальта (III). В альфа-аксиальном положении кобальт координируется с диметилбензимидазольным фрагментом, присоединенным к корриновому кольцу через гибкий аминопропанольный линкер. [6] [7] Активная часть кофактора находится в бета-аксиальном положении. Метилкобаламин (MeCbl) и аденозилкобаламин (AdoCbl) являются биологически активными формами кобаламина, содержащими метильную группу и аденозильный фрагмент в бета-аксиальном положении соответственно. [6] Гидроксокобаламин (HyCbl) с гидроксильной группой в бета-аксиальном положении вырабатывается в результате фотолиза кобаламина и присутствует в биологических условиях, но не находится в активной форме. Цианокобаламин (CyCbl) — это искусственная форма кобаламина, содержащаяся в добавках, которая может быть преобразована в активные формы кобаламина. Рибосвитчи кобаламина могут проявлять селективность по отношению к различным формам кобаламина. [6]
Рибосвитчи , включая кобаламиновый рибосвитч, обычно состоят из домена лиганд-связывания или аптамера и платформы экспрессии. Связывание лиганда вызывает аллостерическую структурную перестройку в платформе экспрессии, что приводит к регуляции экспрессии генов через транскрипционные или трансляционные механизмы. [4] [8]
Кобаламиновые рибопереключатели в целом классифицируются по идентичности аптамера, но могут быть дополнительно классифицированы на класс I (Cbl-I) и класс II (Cbl-II) на основе селективности к аналогам кобаламина и периферических структурных элементов. [6] Рибопереключатели Cbl-I и Cbl-II имеют общий консервативный домен рецептора, состоящий из четырехстороннего соединения и регуляторного домена. Рибопереключатели Cbl-I селективны для AdoCbl , с переменной периферической структурой петли-стебля , облегчающей специфичность лиганда. [6] [9] Более 90% кобаламиновых рибопереключателей, идентифицированных до 2003 года, являются рибопереключателями Cbl-I. [10]
Cbl-II можно далее разделить на два класса (Cbl-IIa и Cbl-IIb). Рибопереключатели Cbl-IIa специфичны для аналогов кобаламина с меньшими β-аксиальными лигандами , включая MeCbl и HyCbl . [6] [9] Эта селективность определяется вариациями периферических элементов. [6]
Рибопереключатели Cbl-IIb также селективны для AdoCbl , [6] [9], но они значительно отличаются по структуре от рибопереключателей Cbl-I. Структурная основа селективности AdoCbl еще не определена. [6] Рибопереключатели Cbl-IIb также различаются по природе генов, которые они регулируют, при этом рибопереключатели Cbl-IIb в первую очередь связаны с генами, участвующими в утилизации этаноламина. [6] Этаноламин в изобилии присутствует в кишечном тракте человека , поскольку он является продуктом распада фосфатидилэтаноламина из клеточных мембран , а также присутствует в обработанных пищевых продуктах. Большинство бактерий , населяющих кишечный тракт, могут использовать этаноламин в качестве источника углерода и азота , повышая экспрессию генов утилизации этаноламина ; это может иметь преимущество в выживании. [11] На экспрессию генов утилизации этаноламина (eutG) влияют два различных механизма. Первый — это двухкомпонентная регуляторная система , которая определяет присутствие этаноламина, а второй механизм — это рибопереключатель AdoCbl , который определяет присутствие AdoCbl, кофактора, необходимого для расщепления этаноламина. Исследование показало, что оба этих регуляторных элемента должны быть активированы для эффективного роста бактерий на среде, содержащей этаноламин. [12] Биоинформационные исследования изначально не увенчались успехом в идентификации рибопереключателей AdoCbl в геномах бактерий , но последующие исследования межгенных областей локуса eutG с использованием Ribex идентифицировали элемент РНК между генами eutT и eutG. [1] [13]
Кроме того, некоторые рибопереключатели кобаламина демонстрируют беспорядочное связывание лигандов, например, рибопереключатель yvrC B. subtilis , который может принимать различные структурные конформации для связывания аналогов кобаламина с меньшими β-аксиальными лигандами, такими как MeCbl и HyCbl, в дополнение к AdoCbl , который имеет гораздо более объемный β-аксиальный фрагмент. [9] Этот рибопереключатель также способен связывать CyCbl . [9]
До доказательства функции рибопереключателя был идентифицирован консервативный мотив последовательности, называемый B 12 box [14] , который соответствует части рибопереключателя кобаламина, [1] и была идентифицирована более полная консервативная структура . [10] [8] Были идентифицированы варианты консенсуса рибопереключателя. [15] До того, как был идентифицирован более широкий спектр рибопереключателей кобаламина, считалось, что существуют только рибопереключатели AdoCbl . [10]
Механизмы отдельных рибопереключателей кобаламина могут различаться, и многие из них еще не выяснены. [16] Четыре канонических механизма для рибопереключателей включают транскрипционную активацию или репрессию и трансляционную активацию или репрессию. [17] [16] При транскрипционной активации терминаторная петля, которая блокирует сайт связывания РНК-полимеразы, присутствует в отсутствие лиганда, а при связывании лиганда образуется антитерминаторная петля, а терминаторная шпилька удаляется. Транскрипционная терминация происходит, когда терминаторная петля формируется в присутствии лиганда. Регулирование посредством трансляционной активации происходит, когда последовательность Шайна-Дальгарно (SD), необходимая для связывания рибосомы с мРНК и инициирования трансляции, изолируется в третичных структурных элементах, когда лиганд не связан и становится доступным после того, как рибопереключатель претерпевает конформационное изменение, вызванное лигандом. При трансляционной репрессии SD изолируется при связывании лиганда. [18] [16] Подтверждено, что рибопереключатель E. coli btuB AdoCbl регулирует экспрессию генов посредством механизма репрессии трансляции, а также рибопереключатель env8 HyCbl. [16]
Известно, что рибосвитч кобаламина регулирует широкий спектр генов, участвующих в метаболизме кобаламина, включая гены, кодирующие белки, участвующие в биосинтезе и транспорте кобаламина. [19] Примерами служат регуляция гена btuB в E. coli, который кодирует белок транспорта кобаламина, [1] регуляция CobA, фермента, который превращает уропорфириноген III в прекоррин-2 во время биосинтеза кобаламина в P. freudenreichiii, [20] и оперон биосинтеза кобаламина (cob) в S. typhimurium [21] и другие.
Возникающая угроза устойчивости к антибиотикам подчеркивает необходимость разработки новых антибиотиков . [17] Рибопереключатели , включая рибопереключатели кобаламина, в настоящее время изучаются в качестве потенциальных целей для новых антибиотиков. [2] Они не только регулируют основные метаболические процессы, но и в основном встречаются у прокариот . На сегодняшний день в некоторых растительных клетках был идентифицирован только один рибопереключатель (рибопереключатель TPP), а в клетках млекопитающих рибопереключатели не были идентифицированы. [2] [3] Нацеливание на регуляторные механизмы, специфичные для бактерий, сводит к минимуму риск побочных эффектов у хозяина. [4] Кроме того, механизм, в котором лиганд связывается со своим рибопереключателем, по своей сути отличается от того, как белок связывает тот же лиганд, что сводит к минимуму помехи между двумя системами. [16]
Биоинформатическое исследование, проведенное в 2019 году, в котором было проанализировано восемь различных классов рибопереключателей на предмет пригодности в качестве мишеней для антибактериальных препаратов , классифицировало рибопереключатель кобаламина как частично подходящий для воздействия антибиотиками. [2] По состоянию на 2019 год рибопереключатели кобаламина были обнаружены у 5174 видов бактерий, 7% из которых являются человеческими патогенами . [2] Разработка антибиотиков, нацеленных на рибопереключатель кобаламина , затруднена из-за того, что не все пути биосинтеза кобаламина регулируются рибопереключателями, а это означает, что антибиотики, нацеленные на рибопереключатель, необходимо будет использовать в сочетании с дополнительными препаратами, нацеленными на альтернативные синтетические пути, чтобы быть эффективными. [2] По состоянию на 2021 год терапевтические средства, нацеленные на рибопереключатель кобаламина, не разрабатываются. [5]
Рибопереключатели идеально подходят для создания биосенсоров благодаря своей способности претерпевать конформационное переключение при связывании со специфическими лигандами. [4] Эти сенсоры сконструированы с рибопереключателем кобаламина выше гена, кодирующего репортерную молекулу. Природа репортерной молекулы может варьироваться в зависимости от желаемого метода обнаружения. Например, репортерный ген может кодировать зеленый флуоресцентный белок ( GFP ), когда желательны методы обнаружения на основе флуоресценции. [22] В присутствии лиганда рибопереключатель претерпевает конформационное изменение, которое блокирует сайт связывания рибосомы, останавливая транскрипцию репортерного гена .
В 2010 году исследователи разработали первый датчик AdoCbl на основе рибопереключателя в E. coli . [4] Этот датчик также использовался для обнаружения биосинтетических предшественников витамина B12, таких как кобинамид, и подтверждения участия определенных генов в метаболизме кобаламина. [4] Совсем недавно этот датчик использовался для скрининга мутантов Ensifer meliloti на предмет их способности синтезировать большие количества витамина B12 . [ 22] Датчики рибопереключателя можно использовать вне клеточной среды. Например, биосенсор, разработанный на основе рибопереключателя кобаламина Propionibacterium freudenreichii, использовался для определения концентрации витамина B12 в ферментированных продуктах питания с высокой чувствительностью. [23]