Интерференционная отражательная микроскопия ( IRM ), также называемая отражательной интерференционной контрастной микроскопией ( RICM ) или отражательной контрастной микроскопией ( RCM ) в зависимости от конкретных используемых оптических элементов, представляет собой метод оптической микроскопии , который использует эффекты интерференции тонкой пленки для формирования изображения объекта на стеклянной поверхности. Интенсивность сигнала является мерой близости объекта к стеклянной поверхности. Этот метод может использоваться для изучения событий на клеточной мембране без использования (флуоресцентной) метки, как в случае с TIRF-микроскопией .
В 1964 году Адам С. Г. Кертис ввел термин «интерференционная отражательная микроскопия» ( IRM ), используя его в области клеточной биологии для изучения фибробластов эмбрионального сердца цыпленка. [1] [2] Он использовал IRM для изучения мест адгезии и расстояний между фибробластами, отметив, что контакт со стеклом в основном ограничивался периферией клетки и псевдоподиями . [1]
В 1975 году Йохан Себастьян Плоем представил усовершенствование IRM (опубликованное в главе книги [3] ), которое он назвал отражательной контрастной микроскопией ( RCM ). [4] Усовершенствование заключается в использовании так называемого анти-гибкого объектива и скрещенных поляризаторов для дальнейшего уменьшения рассеянного света в оптической системе. Сегодня эта схема в основном называется отражательной интерференционной контрастной микроскопией ( RICM ), [5] [6] название которой было введено Барейтером-Ханом и Конрадом Беком в 1979 году. [7]
Однако термин IRM иногда используется для описания установки RICM. Множественность названий, используемых для описания техники, вызвала некоторую путаницу и обсуждалась еще в 1985 году Вершуэреном. [8]
Для формирования изображения прикрепленной клетки свет определенной длины волны пропускается через поляризатор . Этот линейно поляризованный свет отражается светоделителем в направлении объектива , который фокусирует свет на образце. Стеклянная поверхность в определенной степени отражает и будет отражать поляризованный свет. Свет, который не отражается стеклом, будет попадать в клетку и отражаться клеточной мембраной. Могут возникнуть три ситуации. Во-первых, когда мембрана находится близко к стеклу, отраженный от стекла свет смещается на половину длины волны, так что свет, отраженный от мембраны, будет иметь фазовый сдвиг по сравнению с отраженным светом от фаз стекла и, следовательно, компенсируют друг друга ( интерференция ). Эта интерференция приводит к появлению темного пикселя на конечном изображении (левый случай на рисунке). Во-вторых, когда мембрана не прикреплена к стеклу, отражение от мембраны имеет меньший фазовый сдвиг по сравнению с отраженным светом от стекла, и, следовательно, они не будут компенсировать друг друга, что приводит к появлению яркого пикселя на изображении (правый случай на рисунке). В-третьих, при отсутствии образца регистрируется только отраженный от стекла свет, который на конечном изображении отображается в виде ярких пикселей.
Отраженный свет вернется к светоделителю и пройдет через второй поляризатор, который устраняет рассеянный свет, прежде чем достичь детектора (обычно это ПЗС-камера ) для формирования окончательного изображения. Поляризаторы могут повысить эффективность за счет уменьшения рассеянного света; однако в современной установке с чувствительной цифровой камерой они не требуются. [9]
Отражение вызвано изменением показателя преломления, поэтому на каждой границе часть света будет отражаться. Величина отражения определяется коэффициентом отражения , согласно следующему правилу: [8]
Отражательная способность – это отношение интенсивности отраженного света ( ) к интенсивности входящего света ( ): [8]
Используя типичные показатели преломления для стекла (1,50–1,54, см. список ), воды (1,31, см. список ), клеточной мембраны (1,48) [10] и цитозоля (1,35), [10] можно рассчитать долю света, отраженного каждым интерфейсом. Величина отражения увеличивается по мере увеличения разницы между показателями преломления, что приводит к большому отражению от интерфейса между поверхностью стекла и культуральной средой (примерно равному воде: 1,31–1,33). Это означает, что без клетки изображение будет ярким, тогда как при прикреплении клетки разница между средой и мембраной вызывает большое отражение, которое слегка смещено по фазе, вызывая интерференцию со светом, отраженным стеклом. Поскольку амплитуда света, отраженного от интерфейса среда-мембрана, уменьшается из-за рассеяния, прикрепленная область будет казаться темнее, но не полностью черной. Поскольку конус света, сфокусированный на образце, приводит к появлению различных углов падающего света, существует широкий диапазон интерференционных картин. Когда узоры отличаются менее чем на 1 длину волны (полоса нулевого порядка), узоры сходятся, что приводит к увеличению интенсивности. Этого можно добиться, используя объектив с числовой апертурой больше 1. [8]
Для получения изображений клеток с помощью ИРМ микроскопу необходимы как минимум следующие элементы: 1) источник света, например галогенная лампа, 2) оптический фильтр (пропускающий небольшой диапазон длин волн) и 3) светоделитель (отражающий 50% и пропускающий 50% выбранной длины волны).
Источник света должен производить свет высокой интенсивности, так как много света будет теряться расщепителем луча и самим образцом. Различные длины волн приводят к различным изображениям IRM; Берейтер-Хан и его коллеги показали, что для их клеток PtK 2 свет с длиной волны 546 нм давал лучший контраст, чем синий свет с длиной волны 436 нм. [7] Было сделано много уточнений в базовой теории IRM, большинство из которых повышают эффективность и выход формирования изображения. Размещая поляризаторы и четвертьволновую пластину между расщепителем луча и образцом, линейно поляризованный свет можно преобразовать в круговой поляризованный свет , а затем преобразовать обратно в линейный поляризованный свет, что повышает эффективность системы. В статье о круговом поляризаторе этот процесс обсуждается подробно. Кроме того, включив второй поляризатор, который повернут на 90° по сравнению с первым поляризатором, можно предотвратить попадание рассеянного света на детектор, что увеличивает отношение сигнал/шум (см. Рисунок 2 Verschueren [8] ).
Существует несколько способов использования IRM для изучения биологических образцов. Ранние примеры использования этой техники были сосредоточены на адгезии клеток [1] и миграции клеток . [11]
Совсем недавно эта техника была использована для изучения экзоцитоза в хромаффинных клетках . [9] При визуализации с использованием DIC хромаффинные клетки выглядят как круглые клетки с небольшими выступами. Когда та же клетка визуализируется с использованием IRM, отпечаток клетки на стекле можно четко увидеть как темную область с небольшими выступами. Когда везикулы сливаются с мембраной, они выглядят как маленькие светлые круги внутри темного отпечатка (яркие пятна в верхней клетке на правой панели).
Пример слияния везикул в хромаффинных клетках с использованием IRM показан в фильме 1. При стимуляции 60 мМ калия внутри темного следа хромаффинной клетки начинают появляться множественные яркие пятна в результате экзоцитоза плотных ядерных гранул. Поскольку IRM не требует флуоресцентной метки, ее можно комбинировать с другими методами визуализации, такими как эпифлуоресценция и TIRF-микроскопия, для изучения динамики белка вместе с экзоцитозом и эндоцитозом везикул. Еще одним преимуществом отсутствия флуоресцентных меток является снижение фототоксичности .