H3K27me3 — это эпигенетическая модификация белка упаковки ДНК гистона H3 . Это метка, которая указывает на триметилирование лизина 27 на белке гистона H3.
Это триметилирование связано с подавлением близлежащих генов посредством образования гетерохроматиновых областей. [1]
H3K27me3 указывает на триметилирование лизина 27 на субъединице белка гистона H3 :
Сокр. | Значение |
Н3 | Семейство гистонов H3 |
К | стандартное сокращение для лизина |
27 | положение аминокислотного остатка (считая от N-конца ) |
мне | метильная группа |
3 | количество добавленных метильных групп |
На этой диаграмме показано прогрессивное метилирование остатка лизина. Триметилирование (справа) обозначает метилирование, присутствующее в H3K27me3.
Геномная ДНК эукариотических клеток обернута вокруг специальных белковых молекул, известных как гистоны . Комплексы, образованные путем зацикливания ДНК, известны как хроматин . Основной структурной единицей хроматина является нуклеосома : она состоит из основного октамера гистонов (H2A, H2B, H3 и H4), а также линкерного гистона и около 180 пар оснований ДНК. Эти основные гистоны богаты остатками лизина и аргинина. Карбоксильный (C) концевой конец этих гистонов способствует взаимодействию гистона с гистонов, а также взаимодействию гистона с ДНК. Амино (N) концевые заряженные хвосты являются местом посттрансляционных модификаций , таких как та, что наблюдается в H3K27me3. [2] [3]
Размещение репрессивной метки на лизине 27 требует привлечения регуляторов хроматина факторами транскрипции . Эти модификаторы представляют собой либо комплексы модификации гистонов, которые ковалентно модифицируют гистоны для перемещения вокруг нуклеосом и открытия хроматина, либо комплексы ремоделирования хроматина, которые включают перемещение нуклеосом без их непосредственной модификации. [4] Эти гистоновые метки могут служить сайтами стыковки других коактиваторов, как это видно на примере H3K27me3. Это происходит посредством подавления генов, опосредованного поликомбом, посредством метилирования гистонов и взаимодействия хромодоменов. Репрессивный комплекс поликомбом (PRC); PRC2 , опосредует триметилирование гистона 3 на лизине 27 посредством активности гистонметилтрансферазы. [5] Эта метка может привлекать PRC1 , который будет связываться и способствовать уплотнению хроматина. [6]
Фактор воспалительной транскрипции NF-κB может вызывать деметилирование H3K27me3 через Jmjd3 . [7]
H3K27me3 связан с восстановлением повреждений ДНК , в частности, с восстановлением двухцепочечных разрывов путем гомологичной рекомбинационной репарации. [8]
H3K27 может подвергаться множеству других модификаций. Он может существовать как в моно-, так и в диметилированном состоянии. Роль этих соответствующих модификаций не так хорошо охарактеризована, как триметилирование. Однако считается, что PRC2 участвует во всех различных метилированиях, связанных с H3K27me.
H3K27me1 связан с продвижением транскрипции и, как видно, накапливается в транскрибируемых генах. Взаимодействия гистон-гистон играют роль в этом процессе. Регулирование происходит через Setd2-зависимое отложение H3K36me3 . [9]
H3K27me2 широко распространен в ядре гистона H3 и, как полагают, играет защитную роль, ингибируя неспецифические для клеточного типа энхансеры. В конечном итоге это приводит к инактивации транскрипции. [10]
Ацетилирование обычно связано с повышением регуляции генов. Это касается H3K27ac , который является активной энхансерной меткой. Он находится в дистальных и проксимальных областях генов. Он обогащен в сайтах начала транскрипции (TSS). H3K27ac имеет общее местоположение с H3K27me3, и они взаимодействуют антагонистическим образом.
H3K27me3 часто взаимодействует с H3K4me3 в двухвалентных доменах. [11] Эти домены обычно находятся в эмбриональных стволовых клетках и играют ключевую роль в правильной дифференциации клеток. H3K27me3 и H3K4me3 определяют, останется ли клетка неспецифической или в конечном итоге будет дифференцироваться. [12] [13] Ген Grb10 у мышей использует эти двухвалентные домены. Grb10 демонстрирует импринтированную экспрессию генов. Гены экспрессируются из одного родительского аллеля, одновременно подавляясь в другом родительском аллеле. [14] Деметилирование H3K27me3 может привести к повышению регуляции генов, контролирующих связанный со старением секреторный фенотип (SASP). [7]
Другие хорошо охарактеризованные модификации — это H3K9me3, а также H4K20me 3, которые, как и H3K27me3, связаны с репрессией транскрипции через образование гетерохроматиновых областей. Монометилирование H3K27, H3K9 и H4K20 связано с активацией генов. [15]
Посттрансляционная модификация хвостов гистонов либо комплексами модификации гистонов, либо комплексами ремоделирования хроматина интерпретируется клеткой и приводит к сложному, комбинаторному транскрипционному выходу. Считается, что гистоновый код диктует экспрессию генов посредством сложного взаимодействия между гистонами в определенной области. [16] Текущее понимание и интерпретация гистонов исходят из двух крупномасштабных проектов: ENCODE и Epigenomic roadmap. [17] Целью эпигеномного исследования было изучение эпигенетических изменений по всему геному. Это привело к состояниям хроматина, которые определяют геномные области путем группировки взаимодействий различных белков и/или модификаций гистонов вместе. Состояния хроматина были исследованы в клетках Drosophila путем изучения места связывания белков в геноме. Использование секвенирования ChIP выявило области в геноме, характеризующиеся различной полосатостью. [18] Различные стадии развития также были профилированы у Drosophila, акцент был сделан на значимости модификации гистонов. [19] Изучение полученных данных привело к определению состояний хроматина на основе модификаций гистонов. [20] Были картированы определенные модификации, и было обнаружено, что обогащение локализуется в определенных геномных регионах. Было обнаружено пять основных модификаций гистонов, каждая из которых была связана с различными функциями клеток.
Геном человека был аннотирован состояниями хроматина. Эти аннотированные состояния могут быть использованы как новые способы аннотирования генома независимо от базовой последовательности генома. Эта независимость от последовательности ДНК усиливает эпигенетическую природу модификаций гистонов. Состояния хроматина также полезны для идентификации регуляторных элементов, которые не имеют определенной последовательности, таких как энхансеры. Этот дополнительный уровень аннотации позволяет глубже понять регуляцию генов, специфичную для клеток. [21]
Причинно-следственная связь между гистоновыми метками, передаваемыми спермой , и экспрессией генов и развитием наблюдается у потомков и внуков. [22]
Считается, что H3K27me3 участвует в развитии некоторых заболеваний, поскольку выполняет функцию репрессивной метки.
Синдром Коэна-Гибсона — это расстройство, связанное с избыточным ростом, которое характеризуется дисморфическими чертами лица и переменной интеллектуальной недостаточностью. В некоторых случаях de novo миссенс-мутация в EED была связана с пониженными уровнями H3K27me3 по сравнению с диким типом . Это снижение было связано с потерей активности PRC2. [23]
Диффузная срединная глиома, измененная H3K27me3 (DMG), также известная как диффузная внутренняя глиома моста (DIPG), является типом высокоагрессивной опухоли мозга, которая чаще всего встречается у детей. Все DMG демонстрируют потерю H3K27me3, примерно в 80% случаев из-за генетической мутации, заменяющей лизин на метионин (M), известной как H3K27M. В редких формах потеря H3Kme3 опосредована сверхэкспрессией ингибирующего белка EZH, что снижает активность PRC2. [24]
Существуют доказательства, которые предполагают, что подавление экспрессии H3K27me3 в сочетании с дифференциальной экспрессией H3K4me3, а также метилирование ДНК может играть роль в фетальном алкогольном спектре расстройства (FASD) у мышей C57BL/6J. Считается, что этот гистоновый код влияет на путь, связанный с пероксисомами, и вызывает потерю пероксисом для смягчения окислительного стресса. [25]
Гистоновую метку H3K27me3 можно обнаружить различными способами:
1. Секвенирование иммунопреципитации хроматина ( секвенирование ChIP ) измеряет количество обогащения ДНК после связывания с целевым белком и иммунопреципитации. Это приводит к хорошей оптимизации и используется in vivo для выявления связывания ДНК-белок, происходящего в клетках. ChIP-Seq можно использовать для идентификации и количественной оценки различных фрагментов ДНК для различных модификаций гистонов вдоль геномной области. [26]
2. Микрококковое нуклеазное секвенирование (MNase-seq) используется для исследования областей, связанных с хорошо расположенными нуклеосомами. Использование фермента микрококковой нуклеазы используется для определения расположения нуклеосом. Хорошо расположенные нуклеосомы, как видно, имеют обогащение последовательностей. [27]
3. Анализ на секвенирование хроматина, доступного транспозазе ( ATAC-seq ), используется для поиска областей, свободных от нуклеосом (открытый хроматин). Он использует гиперактивный транспозон Tn5 для выявления локализации нуклеосом. [28] [29] [30]
{{cite journal}}
: CS1 maint: бот: исходный статус URL неизвестен ( ссылка )