Флуоресцентные биосенсоры глюкозы — это устройства , которые измеряют концентрацию глюкозы у пациентов с диабетом с помощью чувствительного белка , который передает концентрацию с помощью флуоресценции , альтернативы амперометрическому измерению глюкозы . Из-за распространенности диабета это является основным стимулом в создании флуоресцентных биосенсоров. Недавняя разработка была одобрена FDA, что позволяет использовать новую систему непрерывного мониторинга глюкозы под названием EverSense, которая представляет собой 90-дневный монитор глюкозы с использованием флуоресцентных биосенсоров. [1]
Контроль уровня глюкозы имеет решающее значение для минимизации возникновения повреждений, вызванных диабетом. [2] Как следствие, в сочетании с введением инсулина, основным требованием для больных диабетом является регулярный мониторинг уровня глюкозы в крови. [2] Системы мониторинга, которые в настоящее время широко используются, имеют недостаток в виде количества показаний ниже оптимального из-за их зависимости от капли свежей крови. Некоторые непрерывные мониторы глюкозы имеются в продаже, но страдают от серьезного недостатка в виде короткого срока службы зонда. Большинство из них работают амперометрически. В результате предпринимаются усилия по созданию датчика, который опирается на другой механизм, например, с помощью внешней инфракрасной спектроскопии или с помощью флуоресцентных биосенсоров. [3]
Существуют различные стратегии определения уровня глюкозы с помощью флуоресценции, первой [4] и наиболее распространенной из которых является конкурентный анализ Фретта между глюкозой и меченым полимером глюкозы за сайт связывания конканавалина А. [4] [5] [6] [7] [8] На протяжении многих лет, используя комбинацию рационального дизайна и подходов к скринингу, с разной степенью успеха изучалось множество возможных комбинаций флуоресцентного сенсора для глюкозы: в большинстве подходов концентрация глюкозы преобразуется в изменение флуоресценции либо с помощью пары Фрэта [4] [5] [6] [7] [9] [10] [11] [12] , либо с помощью чувствительных к окружающей среде (сольватохромных) красителей [13] [14] [15] в различных комбинациях флуоресцентная малая молекула, [3] [13] белок [10] [16] [17] или квантовая точка [7] [18] использовались в сочетании с глюкозосвязывающим фрагментом, либо функционализированным флуорофором бороновой кислоты [19] [20], либо белком, таким как глюкозооксидаза, [9] [21] конканавалин А, [6] [7] [10] [20] глюкозо/галактозосвязывающий белок, [8] [11] [12] глюкозодегидрогеназа [10] и глюкокиназа. [14] [22] В целом, изменение, наблюдаемое при анализе конкуренции Fret , невелико (см. ниже).
Флуоресценция — это свойство, присущее некоторым молекулам, называемым флуорофорами , которые испускают фотон вскоре после поглощения фотона с более высокой длиной волны энергии. [23]
Если говорить точнее, то для того, чтобы электрон на внешней орбитали молекулы перешел с орбитали основного состояния на орбиталь возбужденного состояния, ему требуется фиксированное количество энергии, которое в случае хромофоров (молекул, поглощающих свет) может быть получено путем поглощения фотона с энергией, равной или немного большей. Это состояние недолговечно, и электрон возвращается на орбиталь основного уровня, теряя энергию либо в виде тепла, либо в случае флуорофоров, испуская фотон, который из-за потери разницы между энергией поглощенного фотона и требуемой энергией возбуждения будет иметь более низкую энергию, чем поглощенный фотон, или, выражаясь в терминах длины волны, испускаемый фотон будет иметь большую длину волны. Разница между двумя длинами волн называется сдвигом Стокса . [23]
Это свойство можно обнаружить в квантовых точках , некоторых лантаноидах и некоторых органических молекулах с делокализованными электронами . [23]
Эти возбужденные молекулы имеют увеличение дипольного импульса и в некоторых случаях могут претерпевать внутреннюю перестройку заряда. Когда они обладают электроноакцепторной группой и электронодонорной группой на противоположных концах резонансной структуры, они имеют большой сдвиг в распределении заряда по молекуле, что заставляет молекулы растворителя переориентироваться в менее энергетическое расположение, называемое релаксацией растворителя. При этом энергия возбужденного состояния уменьшается, и степень разницы в энергии зависит от полярности растворителя, окружающего молекулу. [23]
Альтернативный подход заключается в использовании сольватохромных красителей, [13] [14] [15], которые изменяют свои свойства (интенсивность, период полураспада, а также спектры возбуждения и испускания) в зависимости от полярности и заряда их окружения. Поэтому их иногда условно называют экологически чувствительными красителями. Они могут быть расположены на определенных остатках, которые либо изменяют свое пространственное расположение из-за конформационного изменения, вызванного глюкозой, либо находятся в глюкозосвязывающем кармане, в результате чего вытеснение воды, присутствующей под действием глюкозы, снижает полярность. [23]
Дополнительным свойством флуоресценции, нашедшим широкое применение, является резонансный перенос энергии Фёрстера ( Fret ), при котором энергия возбужденного электрона одного флуорофора, называемого донором, передается находящемуся поблизости акцепторному красителю, либо темнотушителю (неизлучающему хромофору), либо другому флуорофору, спектр возбуждения которого перекрывается со спектром излучения донорного красителя, что приводит к снижению флуоресценции. [23]
Для целей зондирования это свойство, как правило, используется либо в сочетании с биомолекулой, такой как белок, которая претерпевает конформационное изменение при связывании лиганда, изменяя расстояние между двумя метками на этом белке, либо в конкурентном анализе, в котором аналит должен конкурировать с известной концентрацией фиксированного меченого лиганда за меченый сайт связывания белка. Таким образом, Fret между сайтом связывания и конкурирующим лигандом уменьшается при увеличении концентрации аналита. В общем, конкурирующим лигандом в случае глюкозы является декстран , длинный полимер глюкозы, прикрепленный к каркасу или к ферменту.
На протяжении многих лет, используя комбинацию рационального дизайна и процедур скрининга, было создано множество возможных типологий флуоресцентных датчиков глюкозы с разной степенью успеха. В целом, эти датчики полагаются либо на Fret [4] [5] [6 ] [7] [9] [10] [11] [12], либо на чувствительность к изменению полярности [13] [14] [15] для перевода концентрации глюкозы в интенсивность флуоресценции.
В дополнение к флуорофорам эти сенсоры содержат молекулу, которая придает специфичность глюкозе, обычно это белок. Для этой цели использовались различные белки, часто с разными лабораториями, концентрирующимися на одном конкретном белке.
Первый биосенсор глюкозы, описанный в литературе, был создан в 1982 году группой Шульца с использованием анализа конкуренции Фретта между глюкозой и меченым полимером глюкозы для связывания сайта конканавалина А, заключенного в полом диализном волокне. [21] В результате Con A широко использовался в последующих датчиках в нескольких лабораториях, [4] [5] [6] [7] [8] [10] [24] однако Con A страдает от недостатка высокой токсичности и низкой обратимости. В результате другие связывающие глюкозу белки были и продолжают изучаться несколькими лабораториями.
В компании Biotex Inc. (Хьюстон) Макниколс и Балластардт создали датчик ConA Fret , заключенный в диализное волокно , который в течение нескольких лет проходил испытания на животных моделях. [8] [25] [26]
Амперометрические биосенсоры, напротив, могут использовать только глюкозооксидазу в качестве белка, поскольку это окислительно-восстановительный фермент. Этот белок также использовался в флуоресцентном зондировании либо просто как апофермент, либо как голофермент. Исключением из этой группы сенсоров является группа Biocapacitor A Sode, которая вместо этого использует глюкозодегидрогеназу. [11]
Активность глюкозооксидазы также использовалась для создания флуоресцентных/фосфоресцентных сенсоров на основе времени жизни, используя тот факт, что белок окисляет глюкозу, используя молекулярный кислород, и что кислород гасит флуоресценцию рутения. Это было сделано Увирой и коллегами в 1984 году [20] , а затем несколькими группами. [27] [28] [29] [30] [31] [32]
Если говорить конкретно, то Эндо [31] и Пасик [32] использовали этот анализ гашения кислорода на основе GOx для создания датчика на основе волокон, в то время как МакШейн использует анализ гашения кислорода на основе GOx в микросферах, изготовленных с целью подкожной инъекции, чтобы создать то, что группа назвала «умной татуировкой» — датчик, работающий неинвазивно, передавая данные через кожу, используя тот факт, что кожа проницаема для ближнего инфракрасного света. Кроме того, эта группа создала несколько анализов завершения Fret , сначала с использованием ConA (TRITC-Con A /FITC-декстран (500 кДа)), [24], но затем переключившись на апофермент GOx в 2004 году (TRITC-apo-GOx /FITC-декстран (500 кДа)), [9] и в 2009 году тестируя сенсоры (QSY-21-apo-GOx /Alexa647-декстран) в микросферах. [33] Несколько других групп сконструировали умные татуировки и рассматриваются ниже. [34] [35]
Один конкретный анализ GOx рутениево-кислородного гашения использовался в исследовании группы Инго Климанта в полностью функциональном датчике для измерения уровня глюкозы у здорового добровольца. Датчик был сконструирован путем функционализации кислородного датчика с глюкозооксидазой и вставки его во внешнюю часть катетера, используемого для мониторинга. [32]
Апоферменты по-прежнему могут связывать глюкозу, но из-за отсутствия кофакторов (in vitro) не могут катализировать свою реакцию, поэтому менее склонны к повреждению.
Другие белки, которые были использованы, - это глюкокиназа из термофила группы D'auria [3] [36] и белок, связывающий глюкозу и галактозу ( Ggbp ), который является не ферментом, а периплазматическим белком, участвующим в хемотаксисе, который претерпевает значительные конформационные изменения.
Большинство флуорофоров, используемых в датчиках, представляют собой небольшие молекулы, хотя некоторые датчики были созданы с использованием квантовых точек (КТ) или флуоресцентного белка.
Датчики были сделаны с использованием QD в качестве доноров Fret и небольшой молекулы или золотой наночастицы (темный гаситель) в качестве акцепторов. Примером первого является sensil Леба, оптоволоконная система, в которой квантовая точка прикреплена к ConA, в то время как тетраметилродамин прикреплен к циклодекстрану, который в свою очередь прикреплен к ПЭГ диакрилатному каркасу. [7] Примером последнего является Tang с QDs-ConA-beta-CDs-AuNPs. [37]
Флуоресцентный белок может быть превращен в слитый белок с желаемым белком, минуя этапы маркировки. Шульц создал молекулу Ggbp с двумя GFP на каждом конце. Об этом не сообщалось в литературе, но теоретически это можно улучшить, проведя направленную эволюцию in vitro с использованием FACS. Это нелегко сделать с помощью маркировки, хотя Питнер предпринял попытку скрининга. [38]
Флуоресценция — не единственный тип люминесценции, достижимый в биологических системах: хемилюминесценция, генерация света посредством химических реакций, производится некоторыми белками, такими как аквеорин из симбионта у медуз и люцифераза из симбионта у светлячков. Они использовались для создания сенсоров глюкозы: Даунерт создает сенсор аквеорина, расщепленный Ggbp [ 16 ] , а в 2009 году Кодзи Соде создал Ggbp -люциферазу с Asp459Asn (Glc, а не Gal). [39]
В дополнение к красителям с малыми молекулами использовались флуоресцентные белки: одна группа создала датчик Fret ближнего инфракрасного диапазона (NIR) , обнаруженный с помощью разрешенной во времени /нанотомографии аллофикоцианин-ConA/малахитовый зеленый-декстран, [10] [40] [41] [42] относительно Fret с аллофикоцианином, который был рассмотрен MacColl. [43]
В дополнение к белку в качестве глюкозосвязывающего фрагмента использовались функционализированные молекулы бороновой кислоты . Бороновая кислота связывается с соседними группами, предпочтительно гидроксильными; поэтому она имеет высокое сродство к углеводам. [44] Использование группы бороновой кислоты для распознавания сахарида широко изучалось Шинкаем, Джеймсом и их коллегами. [45] [46] [47] [48] [49] Чтобы воспользоваться этим, было предпринято несколько подходов.
Одним из подходов является гашение Фрета , при котором система может работать посредством модуляции гашения красителя виологеном, функционализированным бороновой кислотой. [50]
Альтернативный подход заключается в фотоиндуцированном переносе электронов (ПЭТ), механизме тушения флуоресценции из-за богатой электронами третичной аминогруппы вблизи флуорофора, на которую влияет изменение заряда близлежащей боронатной группы при связывании глюкозы. Это использовалось в сочетании с временем жизни одной группой., [51] [52] не только во флуоресценции, но и в качестве агента ЯМР для визуализации с красителем борной кислоты европия (3+) . [53]
Большинство сенсоров, использующих экологически чувствительные красители, использовали Ggbp , транспортный белок, который связывается с D-глюкозой и D-галактозой и переносит их к мембраносвязанному рецептору Trg, запуская хемотаксис бактерии по направлению к этому источнику глюкозы. [54] Он принадлежит к семейству malG в Escherichia coli, которое включает белок, связывающий мальтозу, [55] который, в зависимости от присутствия глюкозы, может принимать две различные конформации [55] или, возможно, три [56], создавая движение шарнира на 31° между двумя глобулярными доменами, соединенными шарниром, который является карманом связывания глюкозы. [57] Его сродство к глюкозе составляет K = 0,2 мкМ, [58] что намного ниже патофизиологического диапазона глюкозы, обнаруженного при диабете (1,7–33 мМ). [59] В результате было проведено несколько исследований по снижению сродства Ggbp , что в противном случае привело бы к почти насыщению Ggbp на протяжении патофизиологических концентраций глюкозы. Сродство связывания Ggbp изменяется, когда он маркируется эндостерически или перистерически, поэтому было создано несколько мутантов, которые работают в диапазоне, близком к патофизиологической глюкозе.
Ggbp содержит пять остатков триптофана, два из которых, W183 в сайте связывания и W284 в N-концевом домене (который может связывать кальций), влияют на спектры аутофлуоресценции при связывании глюкозы. [60]
Некоторые исследования с Ggbp и сольватохромными красителями направлены не на создание сенсора, а на выяснение химии, лежащей в основе конформационного изменения Ggbp . Примерами этого являются исследование с использованием L255C с акрилоданом и рутением на N-конце, выявляющее три конформационных состояния: закрытое и скрученное, [56] флуоресценция и фосфоресценция триптофана W183 при нормальных условиях [52], под высоким давлением [61] и с кальцием или без него. [62]
Сод и др. создали серию мутантов Ggbp для увеличения Kd в немеченой форме вблизи физиологического диапазона (Phe16Ala) и удаления специфичности галактозы (Asp14Glu). [12]
Реакция чувствительного к окружающей среде красителя, прикрепленного к определенному остатку Ggbp, зависит не только от сайта маркировки, который имеет определенную среду, но и от природы красителя, который взаимодействует по-разному в зависимости от своей геометрии. Взаимодействие между данным красителем и его средой трудно предсказать in silico. В результате, чтобы получить работающий сенсор, несколько независимых исследований проверили набор чувствительных к окружающей среде красителей, прикрепленных к нескольким возможным сайтам в связывающем кармане (эндостерический сайт), рядом с ним (перистерический сайт) или вдали от него (аллостерический сайт). [63]
Одним из преимуществ Ggbp является то, что в диком типе отсутствуют остатки цистеина, что делает введение этого остатка в определенное место идеальным для маркировки.
Команда под руководством Хомма Хеллинги [nb 1] провела два больших скрининга. В первом (2002) они создали серию (320 конструкций) меченых мутантов 11 бактериальных периплазматических связывающих белков, включая Ggbp, для которых они создали девять мутантов, вводящих цистеин в определенное место (Y10C, N15C, E93C, E149C, H152C, W183C, L255C, D257C, V296C), и проверили реакцию при маркировке одним из восьми красителей (пирен (340, 390); акрилодан (390, 500); флуоресцеин (485, 520); NBD (490, 540); NBDE (490, 530); JPW4039 (485, 590); JPW4042 (470, 640); и JPW4045 (470, 640)). Из 72 полученных комбинаций Ggbp , меченый акрилоданом в позиции W183C, имел пятикратное изменение и kd=5 мМ. [64]
В последующем исследовании (2007 г.) с использованием термостабильного Ggbp из Thermotoga maritima они провели скрининг пяти мутантов (Y13C, W14C, Y189C, S131C и M239C) с четырьмя красителями ( Ianbd , Acrylodan , Cy5 и Cy3), идентифицируя конъюгат Y13C-Cy5, что дало максимальное увеличение на 50% и сродство при 15 мМ. [63]
Группа под руководством Даунерта использовала три эндостерических мутанта (G148C, H152C и M182C) в сочетании с четырьмя красителями (акрилодан, 1,5- IAEDANS , MDCC и эфир Ianbd ), идентифицируя M182C–MDCC, что дало 30% изменение флуоресценции. [15] Совершенно другой подход был применен Питнером в BD, который использовал один краситель ( Ianbd ), прикрепленный к E149C, в качестве отправной точки для направленного эволюционного скрининга, в котором создается библиотека мутантов и отбирается для «победителей», а именно мутантов, которые соответствуют критериям отбора. С помощью этого подхода они идентифицировали E149C/A213R/L238S с kd 10 мМ и восьмикратным увеличением флуоресценции; [38] этот мутант позже использовался для SPR. [65]
Независимо [nb 2] другая группа (J Pickup) протестировала два мутанта (H152C и M182C), меченых баданом (6-бромацетил-2-диметиламинонафталином), связанным с тиоловой группой цистеина, введенного в сайт 152 (мутант H152C). Это показало трехкратное увеличение (изменение на 200%) при насыщении связывания глюкозы, что делает его идеальным кандидатом для сенсора. Более поздняя работа, принимая мутации, идентифицированные Питнером (выше), [38] создала меченый баданом мутант Ggbp (H152C/A213R/L238S), с константой диссоциации в диапазоне физиологической глюкозы человека (Km=11 мМ) и двукратным увеличением флуоресценции (изменение на 100%).
Другая пара статей предполагает, что естественная флуоресценция (автофлуоресценция) тканей может быть использована для отслеживания концентрации глюкозы. Эти исследования использовали тот факт, что NAD(P)H в своей восстановленной форме является автофлуоресцентным, и что метаболиты, такие как глюкоза, вызывают предсказуемое увеличение восстановления NAD(P)H . [66] [67]
Альтернативным способом измерения изменения окружающей среды красителей является изменение их срока службы, что может дать лучшие результаты в некоторых датчиках, с использованием лантаноидов или, например, вышеупомянутого комплекса металл-лиганд рутения (Ru), либо с GOx, либо в качестве акцептора Fret красителя, чувствительного к окружающей среде, как в случае ANS26- Ggbp в кювете с рутениевым покрытием, которая показывает небольшое увеличение интенсивности, но существенное изменение срока службы. [68]
Конструкция флуоресцентного белка — это лишь одна подсистема клинически жизнеспособного устройства мониторинга: чувствительный белок должен быть иммобилизован, а его флуоресценция должна считываться детектирующей подсистемой, которая, в свою очередь, информирует пользователя.
В идеальной ситуации детектор может быть имплантирован с иммобилизованным белком и опрашиваться по радиочастоте, однако в настоящее время это достигается только с помощью амперометрических датчиков. [69] Общий подход для флуоресцентных датчиков заключается в прикреплении белка к одному концу оптического волокна, имплантированного под кожу, в то время как другой конец подключается к подсистеме обнаружения, которая включает в себя разделитель пути (нарезанное волокно или дихроичное зеркало), чтобы позволить волокну передавать как возбуждающий, так и испускаемый свет, отфильтрованный источник света (в общем случае лазер) и отфильтрованный фотодетектор (ПЗС или ФЭУ). Собранная таким образом информация затем анализируется с помощью компьютера. [7] [23]
Кожа проницаема для ближнего инфракрасного света (БИК). В результате этого ближние инфракрасные красители можно измерять через кожу без необходимости использования оптического волокна; МакШейн назвал это «умной татуировкой», создав анализ гашения кислорода в ближнем инфракрасном диапазоне, содержащийся в микросферах. [14]
Однако существует ограниченное количество коммерчески доступных флуоресцентных красителей и ограниченное количество экологически чувствительных красителей, таких как цианин cy7. В результате Питнер создал реактивный краситель Нил красный, [70] [71], но на сегодняшний день не было проведено ни одного исследования с сенсором Нил красный -Ggbp .
Тем не менее, было проведено несколько исследований с использованием красителей NIR. Pickup и Birch создали датчик NIR Fret, измеряющий как разрешенные по времени подсчеты, так и нанотомографию аллофикоцианина-ConA/малахитового зеленого-декстрана, [10] [40] [41] [42] , где аллофикоцианин является флуоресцентным белком NIR. [43] В другом исследовании автофлуоресценция NAPH, переносчика энергии в клетках, была оценена как косвенный индикатор. [66] [67]
Группа в BioTex Inc под руководством МакНиколса и Баллерштадта создала датчик NIR Fret на основе ConA с красителями NIR Alexa 647 и Alexa 750 (первоначально Alexa 647 и cy7), заключенными в диализное волокно, прикрепленное к концу оптического волокна, которое они окрестили «FAS» (флуоресцентный). Для повышения стабильности они прикрепили белок к сефадексу, макропористому гидрогелю. Несмотря на изменение Fret всего на 35% в патофизиологическом диапазоне (возможно, максимальное изменение 40% от отсутствия глюкозы до насыщения), было показано, что датчик снижает функциональность всего на 20% после 450 дней инкубации при 37 °C (99 °F) и контролирует глюкозу так же, как датчик Medtronic/Minimed CGMS в моделях животных (мышь, свинья и собака); однако их заявленная цель — создать умную татуировку. [8] [19] [25] [26] [72]
Лаборатория Draper также разрабатывает умную татуировку и в настоящее время проводит испытания на животных. Характеристики и идентификация датчика не были раскрыты. [73]
Несмотря на более высокую эффективность умных татуировок по сравнению с трансдермальным оптическим волокном, ни одна умная татуировка in vivo пока не была продемонстрирована, тогда как системы на основе волокон продемонстрировали свою способность быть потенциальными датчиками. [7] [19] [25] [26] [31] [50] [74] [75]
Большинство датчиков, упомянутых в предыдущих разделах, состояли из меченых белков в растворе. Единственными датчиками, которые продвинулись в сторону имплантируемого датчика, были либо датчики анализа GOx–рутений с тушением кислорода, либо датчики анализа конкуренции Fret ; на сегодняшний день не было опубликовано ни одного чувствительного к окружающей среде датчика на основе красителя, прикрепленного к концу волокна.
Для работы биосенсоров на основе волокон белок должен быть иммобилизован на волокне, которое может быть заключено в полую трубку из диализной мембраны [19] [25] [26] [31] [74] или заключено в гидрогель. [7] [50] [75]
Полая диализная трубка представляет собой трубку с диаметром менее миллиметра, стенки которой состоят из пористой сшитой целлюлозы, предназначенной для пропускания небольших растворенных веществ, но не крупных биомолекул, таких как белок с пороговым значением от 0,5 до 20 кДа. [76] Как следствие, они хорошо подходят для сенсорных приложений, где аналит может свободно диффундировать, в то время как белки не могут, как сенсорный белок внутри, так и протеазы крови/интерстициальной ткани. Фактически, датчик GlucoDay от Menarini Diagnostics имеет улучшенный срок службы, поскольку вводимый зонд использует диализную мембрану, хотя для резкого увеличения скорости диффузии он соединен с насосом. [77]
Что касается его применения в флуоресцентном измерении глюкозы, первый биосенсор глюкозы с помощью флуоресценции, который, как уже упоминалось, был изготовлен в 1982 году с помощью анализа конкуренции Fret для сайта связывания ConA, был заключен в герметичную микродиализную трубку [21] в той же лаборатории, а именно J Schultz, в 2001 году было опубликовано другое исследование с использованием микродиализных волокон с использованием датчика Fret ConA, но с другими метками и с использованием сефадекса вместо декстрана (первый был на несколько порядков больше). [5] После этого доктор Балластардт присоединился к BioTex в качестве старшего научного сотрудника под руководством доктора Роджера Макниколса, главного научного сотрудника, где в течение последних семи лет они тестировали ранее упомянутый датчик FAS, который использовал ту же систему Fret в диализной трубке. [8] [19] [25] [26] Если говорить конкретно, меченый белок загружался с помощью наконечника P10 в диализную трубку шириной 200 мкм, которая была запечатана цианоакрилатом (суперклеем) с одного конца, со вставленным внутрь концом оптического волокна или без него.
В области датчиков аналитов датчики глюкозы оказались на переднем крае из-за большого количества исследований датчиков глюкозы в результате распространенности диабета, [23] тем не менее, широкий спектр биосенсоров на основе оптического волокна, в основном использующих ферменты, иммуноанализы, нуклеиновые кислоты, целые клетки или биомиметические материалы и полагающихся на различные методы обнаружения (флуоресценция, поглощение, хемилюминесценция и рассеяние) и методы прикрепления (покрытие, гидрогели или мембраны). [78] [79] [80] [81] [82] [83]
Однако большинство этих датчиков полагаются на улавливание белка в гидрогелях, поскольку они более прочные и защищают белок лучше, чем простое покрытие или мембрана. Гидрогель представляет собой пористую сшитую полимерную матрицу, заполненную водой. Существует несколько типов гидрогелей, которые использовались для улавливания небольших молекул, таких как красители, [84] биомолекулы, такие как ферменты [85] или целые клетки. [86] [87] В случае белка они могут работать либо путем физического улавливания белка с порами меньше, чем у белков, либо путем химического связывания белка с матрицей. В физически улавливающих гелях белок должен быть добавлен, когда гель сшит, поэтому используемые условия не должны повреждать белок, за исключением гидрогеля, для которого требуются неводные растворители или агрессивные химикаты, [88] [89] примером является катализируемый персульфатом TEMED (инициирование пероксидного радикала) акриламид или акрилат, который используется для SDS-PAGE, но не для инкапсуляции белка.
Гидрогели были тщательно изучены, в основном в захвате малых молекул для доставки лекарств, включая случаи, когда наночастицы гидрогеля медленно высвобождают лекарство в целевое место. Гидрогели можно классифицировать в соответствии с их полимерными компонентами, которые могут быть натуральными (гиалуронан, альгиновая кислота, пектин, каррагинан, хондроитинсульфат, декстран и декстрансульфат, хитозан, полилизин, коллаген, карбоксиметилхитин, фибрин, агароза, пуллулан) или синтетическими ( ПЭГ , ПЛА, ПЛГА, ПКЛ, ПГБ, ПВА , ПНВП, П(ГЕМА), [ требуется разъяснение ] п(бискарбокси-фенокси-фосфазен), п(ГЕМА-сульфат) и другие), или гибридом этих двух. В дополнение к органическим гидрогелям существуют золь-гели, которые представляют собой кислородные мостиковые силикаты (или оксид титана), которые полимеризуются в воде. [88] Дополнительная классификация может быть по методу полимеризации, который может быть физическим (замораживание или нагревание) или химическим (γ-лучевая, кислородная или фотоиндуцированная радикальная полимеризация в случае акрилатов, винилов и акриламидов). [89]
Все различные гидрогели имеют различные преимущества и недостатки, такие как биосовместимость, стабильность белка, токсичность или срок службы; например, условия гелеобразования для золь-гелей могут повредить белок, и, как следствие, могут быть добавлены несколько сополимеров, таких как хитозан (создавая гибридные гели) [90] или альтернативные мономеры, такие как модифицированный гликолем тетраэтоксисилан, поскольку он более биосовместим, чем обычно используемый модифицированный метокси- или этокситетраэтоксисилан. [91]
Что касается биосенсоров на основе оптоволокна, то использовались несколько гидрогелей, но в основном полимеры на основе акрилата и золь-гели, либо путем химического, либо физического захвата. В случае ацетилхолинэстеразы, цели многих пестицидов, были созданы сенсоры, химически связывающие фермент с акрилатным гидрогелем [92] или физически захватывающие фермент в золь-гель. [84]
Биосенсор на основе оптического волокна, заключенный в гидрогель, для глюкозы был создан в лаборатории Лёба (Ляо и коллеги) и был назван Sencil. Этот датчик состоял из фотосшитого диакрилат-модифицированного ПЭГ-гидрогеля, содержащего тетрародамин (TRITC), маркированный бетациклодекстрином-конкурентом Fret и апоферментом Concanavalin A, маркированным квантовыми точками. Этот датчик был протестирован только in vitro на функциональность; однако были проведены некоторые тесты, чтобы увидеть совместимость волокна, имплантированного трансдермально мышам. В частности, контролировалось воспаление и измерялась энергия, необходимая для его удаления силой, что доказало, что покрытое коллагеном волокно требовало больше силы, чем удаление волоса, имеющего тот же диаметр (200 мкл). [7]
Другой датчик на основе волокон был создан в лаборатории Сингарам (Санта-Крус). Он использовал гидрогель 2-гидроксиэтилметакрилата в качестве каркаса, на котором были прикреплены два красителя: флуоресцентный анионный краситель и катионный гаситель (точнее, виологен), функционализированный бороновой кислотой, которая принимает отрицательный заряд при связывании с глюкозой, делая общий заряд молекулы нейтральным и менее притягиваемым к флуорофору, следовательно, модулируя его интенсивность на основе концентрации глюкозы. [50] [93]
Большинство гидрогелей прикреплены к волокну, одним исключением является датчик на основе оптоволокна, созданный группой Ицубаяши для измерения уровня глюкозы в рыбе (индикатор здоровья), который использовал диализную мембрану в качестве подложки для гидрогеля. Если быть более конкретным, он опирался на анализ гашения кислорода рутением GOx, где белок смешивался с AWP (азидофункционализированным поливиниловым спиртом, фотосшиваемым полимером) и сшивался с диализной мембраной, которая была обернута вокруг предварительно изготовленного рутениевого кислородного зонда (океанская оптика) и вставлена в иглу 18-го калибра с восемью отверстиями сбоку (похоже на самописец). [31] В такой установке целостность белка не влияет на датчик, если только она не ниже определенной концентрации. Как следствие, разрушение или недоступность фракции белка не является проблемой, что контрастирует с Fret или чувствительным к окружающей среде зондированием. Однако скорость отклика этого датчика низкая и для измерения требуется математическое прогнозирование.
Альтернативное использование бороновой кислоты в гидрогелях наблюдается в Стокке в Норвегии, где набухание акриламидного геля с функциональными группами бората из-за изменения заряда при связывании глюкозы измеряется интерферометром Фабри-Перо на другом конце волокна (обратите внимание, что это другой метод, нежели флуоресценция, и основан на рассеянии). [75]
Исключение из использования размещения оптического волокна трансдермально наблюдается в ранее упомянутом волокне из группы Инго Климанта (тушение рутением кислородом, выделяемым катализируемым глюкозой GOx): Датчик, по сути, был сконструирован путем функционализации готового кислородного датчика с глюкозооксидазой и вставки его в глюкозочувствительный аппарат для амперометрических датчиков, в частности, микродиализный катетер CMA 60, имплантированный трансдермально, и датчик, подключенный к его трубке tygon. Этот датчик был испытан на человеке-добровольце и показал результаты, сопоставимые с текущими амперометрическими системами. [32] Использование волокна было продиктовано его предварительной доступностью по сравнению с линзой с рутениевым покрытием, которая достигла бы тех же результатов, поэтому этот подход следует отнести к отдельной категории наряду с трансдермальными волокнами и умными татуировками. Однако целью группы является создание чувствительных к глюкозе наночастиц, которые можно было бы исследовать с помощью трансдермального оптического волокна и контролировать магнитно. В результате группа совершенствует зонд, чувствительный к кислороду, исследуя новые фосфоресцирующие материалы, чувствительные к кислороду, [94] [95] [96] формулу наночастиц [97] [98] [99] и создание магнитных наночастиц. [100] [101]