Резекция конца ДНК , также называемая 5′–3′ деградацией , представляет собой биохимический процесс, при котором тупой конец участка двухцепочечной ДНК (dsDNA) модифицируется путем отрезания некоторых нуклеотидов с 5'-конца для получения 3'-одноцепочечной последовательности. [1] [2] Наличие участка одноцепочечной ДНК (ssDNA) позволяет разорванному концу ДНК точно выровняться с соответствующей последовательностью, так что его можно точно восстановить. [1]
Двухцепочечные разрывы (DSB) могут происходить на любой фазе клеточного цикла, вызывая резекцию концов ДНК и репарационную активность, но они также являются нормальными промежуточными продуктами в митотической рекомбинации. [3] Более того, естественные концы линейных хромосом напоминают DSB, и хотя разрывы ДНК могут вызывать повреждение целостности геномной ДНК, естественные концы упакованы в сложные специализированные защитные пакеты ДНК, называемые теломерами , которые предотвращают репарационную активность ДНК. [3] [4] Теломеры и митотические DSB имеют различную функциональность, но оба подвергаются одному и тому же процессу деградации 5′–3′.
Двухцепочечный разрыв — это вид повреждения ДНК, при котором обе цепи в двойной спирали разрываются. DSB возникают только во время репликации ДНК в клеточном цикле . Кроме того, DSB могут приводить к перестройкам и нестабильности генома. [3] Случаи, когда две комплементарные цепи связаны в точке DSB, потенциально могут быть катастрофическими, так что клетка не сможет завершить митоз при следующем делении и либо умрет, либо, в редких случаях, подвергнется потере хромосом, дупликациям и даже мутациям . [5] [6] Существуют три механизма восстановления DSB: негомологичное соединение концов (NHEJ), микрогомологичное соединение концов (MMEJ) и гомологичная рекомбинация HR. [7] [8] [9] Из них только NHEJ не полагается на резекцию конца ДНК. [2]
Точная репарация DSB необходима для поддержания целостности генома. Из трех механизмов, которые существуют для репарации DSB, механизмы репарации NHEJ и HR являются доминирующими путями. [4] Несколько высококонсервативных белков запускают контрольную точку повреждения ДНК для обнаружения DSB, после чего репарация осуществляется либо путями репарации NHEJ, либо HR. [3] Механизм NHEJ функционирует при лигировании двух разных DSB с высокой точностью, в то время как HR полагается на гомологичный шаблон для репарации концов DSB. [3] [4]
Резекция конца ДНК в пути HR происходит только в двух определенных фазах: фазах S и G2 . [4] [3] Поскольку путь HR требует сестринских хроматид для активации, это событие происходит только в фазах G2 и S клеточного цикла во время репликации. [3] [4] DSB, которые не начали резекцию конца ДНК, могут быть лигированы путем NHEJ, но резекция нескольких нуклеотидов ингибирует путь NHEJ и фиксирует репарацию ДНК путем HR. [10] Путь NHEJ участвует в течение всего клеточного цикла, но он имеет решающее значение для репарации ДНК во время фазы G1 . [3] [10] В фазе G1 нет сестринских хроматид для репарации DSB через путь HR, что делает путь NHEJ критическим механизмом репарации. [3] [10]
Прежде чем резекция может произойти, разрыв должен быть обнаружен. У животных это обнаружение осуществляется PARP1 ; [11] похожие системы существуют и у других эукариот : у растений, по-видимому, эту роль играет PARP2 . [12] Связывание PARP затем привлекает комплекс MRN к месту разрыва. [13] Это высококонсервативный комплекс , состоящий из Mre11 , Rad50 и NBS1 (известный как нибрин [14] у млекопитающих или Xrs2 у дрожжей, где этот комплекс называется комплексом MRX ).
Перед началом резекции белок, взаимодействующий с CtBP1 (CtIP), должен связаться с комплексом MRN, чтобы могла начаться первая фаза резекции, а именно резекция конца на коротком расстоянии. [7] [15] [16] После связывания фосфорилированного CtIP субъединица Mre11 способна эндонуклеолитически разрезать 5'-концевую цепь , вероятно, примерно в 300 парах оснований от конца, [15] [16] а затем действует как 3'→5' экзонуклеаза , чтобы отделить конец 5'-цепи. [16]
Линейные хромосомы упакованы в сложные специализированные защитные пакеты ДНК, называемые теломерами . [3] [4] Структура теломер очень консервативна и организована в виде нескольких коротких тандемных повторов ДНК. [3] Теломеры и DSB имеют различную функциональность, так что теломеры предотвращают процессы репарации ДНК. [3] Во время репликации теломерной ДНК в фазах S/G2 и G1 клеточного цикла 3' отстающая цепь оставляет короткий выступ, называемый G-хвостом. [4] [3] Теломерная ДНК заканчивается на конце 3' G, поскольку 3' отстающая цепь простирается без своей комплементарной 5' C ведущей цепи. G-хвост обеспечивает основную функцию теломерной ДНК, так что G-хвосты контролируют гомеостаз теломер. [4]
В фазе G1 клеточного цикла ассоциированные с теломерой белки RIF1 , RIF2 и RAP2 связываются с теломерной ДНК и предотвращают доступ к комплексу MRX . [4] [3] Такой процесс в S. Cerevisiae, например, отрицательно регулируется этой активностью. Комплекс MRX и комплекс Ku одновременно и независимо связываются с концами DSB. [3] [16] В присутствии ассоциированных с теломерой белков MRX не связывается с концами DSB, в то время как комплекс Ku связывается с концами DSB. [3] Связанный комплекс Ku с концами DSB защищает теломеры от нуклеолитической деградации exo1 . [3] Это приводит к ингибированию удлинения теломеразы на концах DSB и предотвращает дальнейшее действие теломер в фазе G1 клеточного цикла. [3] [4]
В поздней фазе S/G2 клеточного цикла ассоциированные с теломерой белки RIF1, RIF2 и RAP2 проявляют свой ингибирующий эффект, связываясь с теломерной ДНК. [3] В поздней фазе S/G2 протеинкиназа CDK1 (циклинзависимая) способствует теломерной резекции. [4] [3] Этот контроль осуществляется циклинзависимыми киназами , которые фосфорилируют части механизма резекции. [15] Этот процесс смягчает ингибирующий эффект ассоциированных с теломерой белков и позволяет Cdc13 (связывающему белку как на отстающей, так и на ведущей цепи) покрывать теломерную ДНК. [15] Связывание cdc13 с ДНК подавляет контрольную точку повреждения ДНК и позволяет резекции происходить, одновременно допуская удлинение теломеразы на концах DSB. [3]
Одним из важных регуляторных контролей в митотических клетках является решение, какой конкретный путь репарации DSB выбрать. После обнаружения DSB высококонсервативные комплексы привлекаются концами ДНК. [2] Если клетка находится в фазе G1 клеточного цикла, комплекс Ku предотвращает резекцию и запускает факторы пути NHEJ. [3] DSB в пути NHEJ лигируются, шаг в пути NHEJ, который требует активности ДНК-лигазы гетеродимера Dnl4-Lif1/XRCC4 и белка Nej1/XLF. [3] Этот процесс приводит к подверженному ошибкам повторному лигированию концов DSB в фазе G1 клеточного цикла. [3]
Если клетки находятся в фазе S/G2, митотические DSB контролируются активностью Cdk1 и включают фосфорилирование Sae2 Ser267. [4] [3] После того, как фосфорилирование происходит с помощью Cdk1, комплекс MRX связывается с концами dsDNA и генерирует короткую ssDNA, которая растягивается в направлении 5'. [4] [3] 5' ssDNA продолжает резекцию с помощью фермента геликазы , фермента Sgs1 и нуклеаз Exo1 и Dna2. [17] Участие Sae2 Sar267 в процессинге DSB высоко консервативно у всех эукариот, так что Sae2 вместе с комплексом MRX участвуют в двух основных функциях: одноцепочечный отжиг и процессинг шпилечных структур ДНК. [4] Как и все одноцепочечные ДНК в ядре, резецируемая область сначала покрывается комплексом репликационного белка A (RPA), [18] [15], но затем RPA заменяется на RAD51 , образуя нуклеопротеиновую нить, которая может участвовать в поиске соответствующей области, позволяя HR иметь место. [15] 3' одноцепочечная ДНК, покрытая RPA, способствует привлечению Mec1. Mec1 далее фосфорилирует Sae2 вместе с cdk1. Результирующее фосфорилирование Sae2 посредством Mec1 помогает усилить эффект резекции, и это, в свою очередь, приводит к активации контрольной точки повреждения ДНК. [4] [3]
Путь выбора в репарации ДНК строго регулируется, чтобы гарантировать, что клетки в фазе S/G2 и G1 используют соответствующий механизм. Регуляторы как в пути NHEJ, так и в пути HR опосредуют соответствующий путь ответа на репарацию ДНК. [3] Кроме того, недавние исследования репарации ДНК показывают, что регуляция резекции конца ДНК регулируется активностью cdk1 в цикле репликации клеток. [3] [19]
Резекция конца ДНК является ключом к определению правильного пути в NHEJ. Для того чтобы путь NHEJ произошел, положительные регуляторы, такие как комплекс Ku и MRX, опосредуют набор других белков, связанных с NHEJ, таких как Tel1, Lif1, Dnl4 и Nej1. [3] Поскольку NHEJ не зависит от резекции конца, NHEJ может произойти только в фазе G1 клеточного цикла. [3] [10] Как белки, связанные с Ku, так и белки, связанные с NHEJ, предотвращают начало резекции.
Резекция гарантирует, что DSB не будут восстановлены с помощью NHEJ (который соединяет разорванные концы ДНК вместе, не гарантируя их соответствие), а скорее методами, основанными на гомологии (соответствие последовательностей ДНК). Циклин-зависимая протеинкиназа, такая как cdk1 в дрожжах, служит отрицательным регулятором пути NHEJ. [3] Любая активность, связанная с наличием циклин-зависимых протеинкиназ, ингибирует путь NHEJ [3]
Присутствие одноцепочечной ДНК позволяет разорванному концу ДНК точно выстроиться в соответствии с соответствующей последовательностью, чтобы его можно было точно восстановить. [1] Для того, чтобы путь HR произошел в фазах S и G2 клеточного цикла, требуется наличие сестринской хроматиды. [3] [4] 5′–3′ резекция автоматически связывает DSB с путем HR. [2] Циклинзависимая протеинкиназа, такая как cdk1, служит положительным регулятором пути HR. [4] [3] Этот положительный регулятор способствует 5′–3′ нуклеолитической деградации концов ДНК. Наряду с cdk1, комплекс MRX, циклин B1 и DSB, индуцированные Spo11, служат положительными регуляторами пути HR. [17] [19]