Эта статья может быть слишком технической для понимания большинства читателей . ( Апрель 2017 ) |
В этой статье рассматривается белковая инженерия [1] ферментов цитохрома (CYP) P450 . P450 участвуют в ряде биохимических катаболических и анаболических процессов . [2] Природные P450 могут выполнять несколько различных типов химических реакций, включая гидроксилирование , N,O,S-деалкилирование , эпоксидирование , сульфоксидирование, арильно-арильные связи , сужение и расширение колец , окислительную циклизацию, окисление спиртов/альдегидов, десатурацию , окисление азота, декарбоксилирование , нитрование , а также окислительное и восстановительное дегалогенирование . [2] [3] Инженерные усилия часто направлены на 1) улучшение стабильности, 2) улучшение активности, 3) улучшение субстратного охвата, 4) обеспечение способности катализировать неестественные реакции. [4] [5] Инженерия P450 является новой областью в областях химической биологии и синтетической органической химии (хемоферментативной).
Рациональная ферментная инженерия характеризуется созданием специфических мутаций аминокислот на основе механистической или структурной информации. В то время как ферменты P450 механистически хорошо изучены, мутации на основе структурной информации часто ограничены трудностями кристаллизации . [4] [5] Хотя, когда это возможно, высокая степень гибкости и пластичности активного центра, присутствующая в P450, делает кристаллические структуры в значительной степени устаревшими для рационального проектирования. [5] Другая проблема возникает при попытке расширить область применения субстрата. Это часто достигается путем увеличения размера активного центра P450 , что, в свою очередь, может привести к множественным ориентациям стыковки субстрата , что приводит к плохой регио-/стереоселективности. [5]
Направленная эволюция — это стратегия ферментной инженерии, разработанная для имитации естественного отбора в лабораторных условиях. [2] [4] [5] Из-за сложности реализации стратегий рационального проектирования направленная эволюция стала стратегией выбора для инженерии P450. Здесь мутации могут быть введены либо полурационально, либо случайным образом с помощью мутагенеза с насыщением сайтов . Полученный мутант P450 (обычно библиотека мутантов) затем проверяется на желаемую активность. [5] [6] [7] Мутанты, демонстрирующие улучшенные свойства, направляются на последующие раунды мутагенеза, повторяя этот цикл до тех пор, пока желаемая функция не будет адекватно выполнена.
P450 BM3 (также известный как CYP102A1) — это фермент цитохрома P450, выделенный из Bacillus megaterium . [2] [4] [5] [6] [8] BM3 был широко изучен в контексте ферментной инженерии из-за его растворимости, податливых бактериальных изоформ и самодостаточной системы транспорта электронов, а также из-за его синтетической полезности. [8] Инженерные исследования показали, что мутанты BM3 могут 1) быть наделены новыми и дифференцированными субстратными областями 2) проявлять регио-/стереоселективность на новых субстратах и 3) быть сконструированы так, чтобы быть высокоселективными и активными по отношению к новым субстратам. [5] [6] [8] Варианты BM3 были особенно полезны для производства ароматизаторов , вкусовых добавок , феромонов и фармацевтических препаратов . [8] Артемизиновая кислота (используемая в производстве фармацевтического натурального продукта артемизинина ) была получена с использованием варианта BM3, ответственного за эпоксидирование двух алкенов, присутствующих в аморфа-4,11-диене. [8] [9] Окисление валенсена в нооткатон ( ценный грейпфрутовый ароматизатор) было достигнуто с использованием мутанта F87T и I263A (рисунок 1). [8]
Недавно Ван и др. сообщили о варианте BM3, способном выполнять циклопропанирование стиренилолефина . [6] Поскольку нативный BM3 демонстрирует слабую активность циклопропанирования, были предприняты усилия по ферментной инженерии. По своей сути, P450 являются гем-тиолатными ферментами, которые используют молекулярный кислород (O 2 ) и NAD(P)H для выполнения реакций оксигенации. [10] Таким образом, BM3 предпочитает выполнять эпоксидирование, а не реакции циклопропанирования в присутствии олефинов. [6] Реакция между этилдиазоацетатом (EDA) и 1 была выбрана в качестве модельной реакции из-за известной трудности эпоксидирования олефинов с дефицитом электронов с использованием катализа переходными металлами (рисунок 2). [6] Эта реакция генерирует соединение 2 , которое можно легко преобразовать в левомилнаципран (Fetzima), фармацевтическое средство, используемое для лечения клинической депрессии . [6] Для начала были получены мутанты, в которых аксиальный координирующий остаток цистеина в каталитическом центре был заменен аминокислотами серином, аланином, метионином, гистидином и тирозином. Мутант T268A-axH, имеющий аксиальный лиганд гистидина, катализировал реакцию между EDA и 1 с выходом 81% с диастереоселективностью 6:94 и энантиоселективностью 42%. [6] Затем были проведены последующие раунды мутагенеза с насыщением сайта , в результате чего был получен вариант, названный BM3-Hstar (содержащий мутации T268A-axH, L437W, V78M и L181V), который мог катализировать модельную реакцию с выходом более 92%, энантиоселективностью 92% и диастереоселективностью 2:98. [6] В качестве дополнительного преимущества BM3-Hstar также был способен выполнять желаемую реакцию циклопропанирования в присутствии атмосферного кислорода (O2) (единственный известный вариант BM3, способный на это). [6]
Помимо их синтетической полезности, ферменты P450 также были разработаны для лучшего понимания их биохимии. [10] На основе предложенного каталитического цикла аксиально лигированный тиолатный фрагмент (цистеин) отдает электронную плотность металлическому центру, способствуя протонированию промежуточного аниона железа-пероксо ( − OO-Fe 3+ ), который при потере воды генерирует реактивные по связи CH виды железа-оксо (O=Fe 4+ ). [2] [5] [8] [10] Альтернативно, если анион железа-пероксо остается непротонированным, этот реактивный вид может опосредовать разрыв связи CC в альдегидсодержащих субстратах (деформилирование). [10] Для лучшего понимания промежуточной дихотомии между анионом железа-пероксо и железо-оксо видами, CYP125 (который отвечает за различные метаболические процессы, включая деградацию холестерина) был сконструирован для замены аксиального лигированного остатка цистеина селеноцистеином (SeCYP125). В свою очередь, было отмечено, что SeCYP125 способствует образованию окисленных продуктов по сравнению с деформилированными продуктами при реакции с холестерин-26-альдегидом, указывая на то, что повышенное донорство электронов селеноцистеином по сравнению с цистеином приводит к более высокой доле железа-оксо по сравнению с железо-пероксо анионом (рисунок 3). [10]
В 2016 году в работе, опубликованной Dydio et al., сообщалось об искусственном металлоферменте, способном катализировать внутри-/межмолекулярные карбеновые CH-вставки в активированные/неактивированные CH-связи с кинетикой, подобной кинетике нативного фермента (рисунок 4). Описанный катализатор был разработан путем переключения кофактора железо-протопорфирина в термостабильном ферменте P450 CYP119A1 на кофактор иридий-метил -протопорфирин (Ir(Me)-PIX) с последующей направленной эволюцией. Впоследствии был получен CYP119-Max, четверной мутант (C317G, T213G, L69V, V254L). Энантиомерные избытки (ee) до ±98% были получены при фиксированной загрузке катализатора 0,17 мол. %. CYP119-Max также может подвергаться реакциям межмолекулярной вставки, хотя и с умеренным ee (68%). Чтобы продемонстрировать применимость CYP119-Max в производстве тонких химикатов, реакция в масштабе 200 мМ дала этил-2,3-дигидробензофуран-3-карбоксилат с выходом 44%, с числом оборотов 35 000 (TON) и 93% ee. [7]