Аффинный электрофорез — общее название для многих аналитических методов, используемых в биохимии и биотехнологии . С помощью аффинного электрофореза можно получить как качественную, так и количественную информацию. [1] Кросс-электрофорез, первый метод аффинного электрофореза, был создан Накамурой и др. Комплексы фермент-субстрат были обнаружены с помощью кросс-электрофореза. [2] [3] [4] [5] [6] Методы включают так называемый анализ сдвига электрофоретической подвижности , электрофорез со сдвигом заряда и аффинный капиллярный электрофорез . [1] Методы основаны на изменениях в электрофоретическом паттерне молекул (в основном макромолекул ) посредством биоспецифического взаимодействия или комплексообразования . Взаимодействие или связывание молекулы, заряженной или незаряженной, обычно изменяет электрофоретические свойства молекулы. [7] [1] Мембранные белки можно идентифицировать по сдвигу подвижности, вызванному заряженным детергентом . Нуклеиновые кислоты или фрагменты нуклеиновых кислот могут быть охарактеризованы по их сродству к другим молекулам. Методы использовались для оценки констант связывания , например, в лектиновом аффинном электрофорезе или для характеристики молекул со специфическими характеристиками, такими как содержание гликанов или связывание лигандов . [1] Для ферментов и других лиганд-связывающих белков одномерный электрофорез, аналогичный противоэлектрофорезу или «ракетному иммуноэлектрофорезу» , аффинный электрофорез может использоваться в качестве альтернативного количественного определения белка. [8] Некоторые из методов похожи на аффинную хроматографию за счет использования иммобилизованных лигандов .
В настоящее время ведутся исследования по разработке новых способов использования уже имеющихся знаний об аффинном электрофорезе для улучшения его функциональности и скорости, а также предпринимаются попытки усовершенствовать уже существующие методы и адаптировать их для выполнения конкретных задач.
Тип анализа сдвига электрофоретической подвижности (AMSA), электрофорез в агарозном геле используется для разделения аминокислотных комплексов, связанных с белками, от свободных аминокислот. Используя низкое напряжение (~10 В/см) для минимизации риска теплового повреждения, электричество пропускают через агарозный гель. При растворении в горячем буферном растворе (от 50 до 55 градусов Цельсия) он образует вязкий раствор, но при охлаждении он затвердевает в виде геля. Сывороточные белки, гемоглобин, нуклеиновые кислоты, продукты полимеразной цепной реакции и т. д. разделяются с помощью этого метода. Фиксированные сульфатные группы агарозы могут вызывать повышенный электроэндосмос, что снижает разрешение полосы. Использование сверхчистого агарозного геля с небольшим содержанием сульфата может остановить это. [ необходима цитата ]
В этой технике используется высокое напряжение ( ≥ 20 В/см ) с 0,5× трис-боратным буфером, проходящим через агарозный гель. [9] Этот метод отличается от традиционного электрофореза в агарозном геле использованием более высокого напряжения для обеспечения более короткого времени работы, а также получения более высокого разрешения полосы. Другими факторами, включенными в разработку техники быстрого электрофореза в агарозном геле, являются толщина геля и процент агарозы в геле.
Электрофорез с аффинностью бороната использует акриламидные гели, пропитанные бороновой кислотой, для очистки НАД-РНК. Эта очистка позволяет исследователям легко измерять кинетическую активность ферментов декеппингования НАД-РНК. [10]
Аффинный капиллярный электрофорез (ACE) относится к ряду методов, которые основаны на специфических и неспецифических связывающих взаимодействиях для облегчения разделения и обнаружения с помощью формулярного подхода в соответствии с теорией электромиграции . [11] [12] Используя межмолекулярные взаимодействия между молекулами, происходящими в свободном растворе или мобилизованными на твердом носителе, ACE позволяет разделять и количественно определять концентрации аналитов, а также константы связывания и диссоциации между молекулами. [13] [14] В качестве аффинных зондов в CAE используются меченые флуорофором соединения со сродством к целевым молекулам. [15] С помощью ACE ученые надеются разработать сильно связывающие лекарственные препараты, понять и измерить ферментативную активность и охарактеризовать заряды на белках. [16] Аффинный капиллярный электрофорез можно разделить на три отдельных метода: неравновесный электрофорез уравновешенных смесей образцов, динамический равновесный ACE и ACE на основе сродства. [13]
Неравновесный электрофорез уравновешенных смесей образцов обычно используется при разделении и изучении связывающих взаимодействий крупных белков и включает объединение как аналита, так и его рецепторной молекулы в предварительно смешанном образце.
Эти молекулы рецепторов часто принимают форму аффинных зондов, состоящих из молекул, меченых флуорофором, которые будут связываться с целевыми молекулами, которые смешиваются с тестируемым образцом. [13] Эта смесь и ее последующие комплексы затем разделяются посредством капиллярного электрофореза. [13] Поскольку исходная смесь аналита и молекулы рецептора были связаны вместе в равновесии, медленная диссоциация этих двух связанных молекул во время электрофоретического эксперимента приведет к их разделению и последующему сдвигу равновесия в сторону дальнейшей диссоциации. [17] Характерный рисунок размазывания, полученный при медленном высвобождении аналита из комплекса во время эксперимента, можно использовать для расчета константы диссоциации комплекса. [17]
Динамическое равновесие ACE включает комбинацию аналита, обнаруженного в образце, и его рецепторной молекулы, обнаруженной в буферном растворе в капиллярной трубке, так что связывание и разделение происходят только в приборе. [13] Для динамического равновесного аффинного капиллярного электрофореза предполагается, что связывание лиганда с рецептором происходит быстро, когда аналит и буфер смешиваются. Константы связывания обычно выводятся из этого метода на основе пикового сдвига миграции рецептора, который зависит от концентрации аналита в образце. [13]
Капиллярный электрофорез на основе аффинности, также известный как капиллярная электроаффинная хроматография (CEC), включает связывание аналита в образце с иммобилизованной молекулой рецептора на стенке капилляра, микрошариками или микроканалами. [18] CEC обеспечивает самую высокую эффективность разделения из всех трех методов ACE, поскольку нематричные компоненты образца вымываются, а лиганд затем высвобождается и анализируется. [13]
Аффинный капиллярный электрофорез использует преимущества капиллярного электрофореза и применяет их для изучения взаимодействия белков. [16] ACE выгоден тем, что имеет высокую эффективность разделения, более короткое время анализа, может работать при физиологическом pH и предполагает низкий расход лиганда/молекул. [19] [20] Кроме того, для проведения исследований ACE не обязательно знать состав интересующего белка. [16] Однако основным недостатком является то, что он не дает много стехиометрической информации об изучаемой реакции. [20]
Электрофорез в полиакриламидном геле с аффинной ловушкой (PAGE) стал одним из самых популярных методов разделения белков. Это связано не только с его разделительными качествами, но и с тем, что его можно использовать в сочетании с другими аналитическими методами, такими как масс-спектрометрия и вестерн-блоттинг. [14] Помимо помощи в выделении и очистке белков из биологических образцов, AT-PAGE, как ожидается, будет полезен при анализе изменений в экспрессии определенных белков, а также при исследовании посттрансляционных модификаций белков. [21] Этот метод использует двухэтапный подход. Сначала образец белка пропускают через полиакриламидный гель с использованием электрофореза. Затем образец переносят в другой полиакриламидный гель (гель с аффинной ловушкой), где иммобилизованы аффинные зонды. Белки, не имеющие сродства к зондам сродства, проходят через гель сродства, а белки с сродством к зондам будут «захвачены» неподвижными зондами сродства. Затем эти захваченные белки визуализируются и идентифицируются с помощью масс-спектрометрии после переваривания в геле. [14]
Электрофорез с аффинностью к фосфату использует аффинный зонд, который состоит из молекулы, которая специфически связывается с двухвалентными фосфатными ионами в нейтральном водном растворе, известной как «Phos-Tag». Этот метод также использует разделительный гель, изготовленный из мономера Phos-Tag с акриламидом, который сополимеризован. Фосфорилированные белки мигрируют в геле медленно по сравнению с нефосфорилированными белками. Этот метод дает исследователю возможность наблюдать различия в состояниях фосфорилирования любого данного белка. [14] Этот метод позволяет обнаруживать отдельные полосы даже в молекулах белка, которые имеют одинаковое количество фосфорилированных аминокислотных остатков, но фосфорилируются в разных местах аминокислот. [22] [23]