2,4-диеноил-КоА-редуктаза 1, митохондриальная | |||||||
---|---|---|---|---|---|---|---|
Идентификаторы | |||||||
Символ | ДЕКР1 | ||||||
Альтернативные символы | ОВЦС | ||||||
ген NCBI | 1666 | ||||||
HGNC | 2753 | ||||||
ОМИМ | 222745 | ||||||
ПДБ | 1w6u | ||||||
РефСек | NM_001359 | ||||||
UniProt | Q16698 | ||||||
Другие данные | |||||||
Номер ЕС | 1.3.1.34 | ||||||
Локус | Хр. 8 q21.3 | ||||||
|
2,4-Диеноил-КоА-редуктаза, также известная как DECR1, — это фермент , который у людей кодируется геном DECR1 , расположенным на хромосоме 8. Этот фермент катализирует следующие реакции [1] [2] [3]
DECR1 участвует в бета-окислении и метаболизме полиненасыщенных жирных еноил-КоА-эфиров. В частности, он катализирует восстановление 2,4-диеноил-КоА-тиоэфиров различной длины кофактором НАДФН до 3-транс-еноил-КоА эквивалентной длины. В отличие от расщепления насыщенных жиров, для расщепления цис- и транс- полиненасыщенных жирных кислот требуется три дополнительных фермента для получения продукта, совместимого со стандартным путем бета-окисления. DECR является вторым таким ферментом (другие — еноил-КоА-изомераза и диеноил-КоА-изомераза) и является этапом, ограничивающим скорость в этом вспомогательном потоке. DECR способен восстанавливать как 2-транс,4-цис-диеноил-КоА, так и 2-транс,4-транс-диеноил-КоА-тиоэфиры [4] с одинаковой эффективностью. [5] Это необычно, поскольку большинство ферментов являются высоко стереоселективными или стереоспецифичными . [6] Нет четкого объяснения отсутствия стереоспецифичности у DECR. [5]
Эукариотический DECR существует как в митохондриях (mDECR), так и в пероксисомах (pDECR, кодируется геном DECR2 ). Ферменты из каждой органеллы гомологичны и являются частью суперсемейства короткоцепочечных дегидрогеназ/редуктаз SDR. mDECR имеет массу 124 кДа и состоит из 335 аминокислот до посттрансляционной модификации . [2] Вторичная структура разделяет многие мотивы SDR, включая складку Россмана для сильного связывания НАДФН. Белок существует как гомотетрамер в физиологической среде, но было показано, что он также образует мономеры и димеры в растворе. [8]
Кристаллизация mDECR [7] показывает, что фермент обеспечивает сеть водородных связей от ключевых остатков в активном центре до NADPH и 2,4-диеноил-КоА, который позиционирует гидрид на 3,4 Å к Cδ по сравнению с 4,0 Å к Cβ (не показано). Обсуждавшийся ранее енолятный промежуточный продукт стабилизируется остатками дополнительных водородных связей с Tyr166 и Asn148. Lys214 и Ser210 (консервативные остатки во всех ферментах SDR), как полагают, увеличивают pKa Tyr166 и стабилизируют переходное состояние. [7] Кроме того, на одном конце активного центра имеется гибкая петля, которая обеспечивает достаточно места для длинных углеродных цепей. Это, вероятно, дает ферменту гибкость для обработки цепей жирных кислот различной длины. Длина субстрата для катализа mDECR, как полагают, ограничена 20 атомами углерода, при которых эта очень длинная жирная кислота сначала частично окисляется pDECR в пероксисоме. [9]
Восстановление тиоэфира 2,4-диеноил-КоА с помощью НАДФН до 3-еноил-КоА происходит по двухстадийному последовательному механизму через промежуточный енолят. [10] DECR связывает НАДФН и тиоэфир жирной кислоты и позиционирует их для специфического переноса гидрида к Cδ на углеводородной цепи. Электроны из двойной связи Cγ-Cδ перемещаются в положение Cβ-Cγ, а электроны из Cα-Cβ образуют енолят. На последнем этапе протон отрывается от воды [11] до Cα, и тиоэфир преобразуется, в результате чего образуется одна транс-двойная связь Cβ-Cγ. Поскольку конечный протон поступает из воды, pH оказывает значительное влияние на каталитическую скорость, при этом фермент демонстрирует максимальную активность при ~6,0. Снижение активности при pH < 6,0 можно объяснить депротонированием титруемых остатков, которые влияют на сворачивание белка или связывание субстрата. Мутантные белки с модификациями в ключевых кислых аминокислотах (E154, E227, E276, D300, D117) показывают порядок величины увеличения K m и/или уменьшения V max . [8]
2,4-Диеноил-КоА-редуктаза из Escherichia coli имеет очень похожие кинетические свойства с таковыми у эукариот, но значительно отличается как по структуре, так и по механизму. В дополнение к НАДФН, DECR E. Coli требует набора молекул FAD , FMN и железо-серного кластера для завершения переноса электронов. [12] Еще одним отличием является то, что DECR E. Coli производит конечный 2-транс-еноил-КоА без необходимости в еноил-КоА-изомеразе. [11] Активный центр содержит точно позиционированный Tyr166, который отдает протон Cγ после атаки гидрида на Cδ, завершая восстановление за один согласованный шаг. [13] Удивительно, но мутация Tyr166 не устраняет активность фермента, а вместо этого изменяет продукт на 3-транс-еноил-КоА. Текущее объяснение заключается в том, что Glu164, кислотный остаток в активном центре, действует как донор протонов для Cα, когда Tyr166 отсутствует. [14]
DECR является одним из трех вспомогательных ферментов, участвующих в ограничивающем скорость этапе окисления ненасыщенных жирных кислот в митохондриях. В частности, этот фермент способствует разрыву двойных связей во всех четных положениях и некоторых двойных связей в нечетных положениях. [8] Структура тройного комплекса pDCR (пероксисомальные 2,4-диеноил-КоА-редуктазы) с НАДФ и его субстратом дает существенные и уникальные сведения о механизме катализа . [15] В отличие от других членов семейства SDR, катализ pDCR не включает пару тирозин - серин . [8] Вместо этого каталитически критический аспартат вместе с инвариантным лизином поляризует молекулу воды, чтобы отдать протон для образования продукта. [9] Хотя pDCR может использовать 2,4-гексадиеноил-КоА в качестве субстрата, сродство к короткоцепочечным жирным кислотам ниже. Анализ шарнирного движения DCR из митохондрий и пероксисом проливает свет на причину уникальной способности пероксисом укорачивать очень длинноцепочечные жирные кислоты . [16]
Мутации в гене DECR1 могут привести к дефициту 2,4-диеноил-КоА-редуктазы [ 17] — редкому, но смертельному заболеванию.
Благодаря своей роли в окислении жирных кислот, DECR может служить терапевтической мишенью для лечения инсулиннезависимого сахарного диабета ( NIDDM ), который характеризуется гипергликемией из-за повышенного окисления жирных кислот. [8]
В исследованиях на мышах с нокаутом DECR1 −/− субъекты накапливают значительные концентрации моно- и полиненасыщенных жирных кислот в печени во время голодания (таких как олеиновая кислота , пальмитолеиновая кислота , линолевая кислота и линоленовая кислота ). У мутантных субъектов также была обнаружена плохая переносимость холода, снижение дневной активности и общее снижение адаптации к метаболическим стрессорам . [18]